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1、泌尿外科专业毕业论文 精品论文 功能性T细胞与移植免疫相关性的研究关键词：功能性T细胞 移植免疫 排斥反应 移植术摘要：目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例
2、，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.
3、0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和A
4、TN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的
5、CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL
6、-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。正文内容 目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)
7、：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式
8、细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-
9、17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢
10、素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥
11、反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志
12、愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干
13、预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23
14、pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明
15、显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表
16、达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F
17、(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6
18、C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0
19、.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0
20、.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-1
21、7F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通
22、过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-
23、17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于
24、对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+
25、T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F
26、和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程
27、度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收
28、集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，
29、明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心
30、脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。
31、 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相
32、比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植
33、功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行
34、秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.5
35、1pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞
36、：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步
37、下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植
38、排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/cC57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4
39、+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50
40、pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94
41、和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一
42、。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者
43、7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组12例(BALB/cC57BL/6，异基因组)和环孢素干预组11例(BALB/c
44、C57BL/6，环孢素组)。移植心搏动减弱时立即处死小鼠取脾脏，采用流式细胞术检测小鼠脾脏CD4+T细胞中IFN-、IL-4、IL-17A和IL-17F的表达。应用SPSS12.0统计软件进行秩和检验。 结果： 临床实验结果：(1)IL-4检测：排斥组IL-4中位数为1.17pg/ml，明显低于稳定组(3.125pg/ml)和对照组(5.21pg/ml)，P值均0.01；稳定组低于对照组，P0.05；ATN组IL-4中位数为1.12pg/ml，明显低于稳定组和对照组，P值均0.01。(2)IFN-检测：排斥组IFN-中位数为33.20pg/ml，明显高于稳定组(2.23pg/ml)和对照组(4
45、.37pg/ml)，P值均0.01。(3)IL-17A检测：排斥组IL-17A中位数为11.50pg/ml，明显高于对照组(2.68pg/ml)、稳定组(5.52pg/ml)和ATN组(7.51pg/ml)，P值均0.01；ATN组和稳定组均高于对照组，P值均0.01。 动物实验结果：心脏移植后受者小鼠脾脏CD4+T细胞中表达不同细胞因子的细胞所占比例：(1)表达IL-4的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为3.32和3.58，明显高于异基因组(1.01)，P值均0.01。(2)表达IFN-的CD4+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.79和0.86，明显低于异基因组(2.51
46、)，P值均0.01。(3)表达IL-17A的CD+T细胞：同基因组和环孢素组中位数分别为0.94和1.35，明显低于异基因组(2.43)，P值均0.01。(4)表达IL-17F的CD4+T细胞：同基因组中位数为2.16，明显低于异基因组(7.78)和环孢素组(8.70)，P值均0.01。 结论： (1)器官移植后发生排斥反应时，IL-4处于表达水平较低，而IL-17A、IL-17F和IFN-则较高；当排斥反应被纠正后IL-4表达逐渐升高，而IL-17A和IFN-降低，IL-17F则变化不大。 (2)肝脏、肾脏移植排斥反应患者出现临床表现之前，血清IL-17A和IFN-表达水平已明显升高；随着排
47、斥反应的纠正它们又显著下降，由于变化出现早于临床症状，所以可作为预测排斥反应发生和纠正的指标之一。 (3)肾移植术后发生ATN的患者血清IL-17A处于较高水平，当病情好转时IL-17A也逐步下降，因此IL-17A可以作为预测ATN患者肾功能恢复的指标之(4)与Th1/Th2类细胞因子相比，IL-17A和IL-17F的表达高低不但能预测排斥反应的发生，而且可以作为判断排斥反应严重程度的指标。目的：探讨功能性T细胞(Th1、Th2和Th17)在器官移植后不同免疫状态下的变化，通过检测不同细胞代表性的细胞因子IFN-(Th1)、IL-4(Th2)和IL-17A、IL-17F(Th17)在移植后的表
48、达，为排斥反应的预防、诊断和治疗转归提供辅助依据。 方法：临床实验抽取志愿者血样包括肝脏移植患者7例、肾脏移植患者15例，正常对照者9例。分组如下：排斥反应组(排斥组)：共10例，其中肝脏移植排斥反应4例，肾脏移植排斥反应6例，共收集标本47例；功能稳定组(稳定组)：共7例，其中肝脏移植功能稳定3例，肾脏移植功能稳定4例，共收集标本49例；急性肾小管坏死组：急性肾小管坏死5例，共收集标本34例；正常对照组(对照组)：9例。采用ELISA实验检测血清中IFN-、IL-4和IL-17A的表达。动物实验建立袖套法小鼠颈部心脏移植模型，分组如下：同基因移植组9例(C57BL/6C57BL/6，同基因组)，异基因移植组