油菜蜂花粉对正常小鼠免疫功能的影响.pdf

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1、4 4实用预防医学2 0 0 5 年2 月第1 2 卷第1 期P r a c t i c a l P r e v e n t iv e Me d ic in e , F e b . 2 0 0 5 , V o l 1 2 , N o . 1 文章编号: 1 0 0 6 一 3 1 1 0 ( 2 0 0 5 ) 0 1 一 0 0 4 4 一 0 3【 论著 】 油菜蜂花粉对正常小鼠免疫功能的影响 张荣标, , 何 聆2 , 陈 润 , 林 健 , 林 蔚 摘要: 目的观察油菜蜂花粉对正常小鼠 免疫功能的影响。 方法 分别经口 给予B a lb / c 小鼠1 6 5 , 3 3 0 , 6

2、6 0 m g / k g B W三个剂量组的 油菜蜂花粉和蒸馏水对照组3 0 d 。 分别测定小鼠 非特异性免疫功能、 细胞免疫功能、 体液免疫功能。 结 果 经 测 试 发 现 油菜 蜂花 粉各 剂 量 组 对 小鼠 脏器 / 体重比 值均 无影响; 6 6 0 m 留 吨B W剂 量组能增强C o n A 诱导的 脾 淋巴 细胞增殖能 力; 3 3 0 , 6 6 0 m g / 吨B W剂量组均能明 显提高迟发型变态反应水平、 促进抗体生成细胞的生成、 升高小鼠 血清溶血素抗体水平、 增强小鼠 碳廓清能力, 并能明显增强小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞的能力以及增强小鼠N K细 胞活力。

3、结论油菜蜂花粉具有增强小鼠免疫功能作用。 关键词:、油菜蜂花粉; 免疫功能; 影响 中图分类号: R- 3 3 2文献标识码: A T h e E f f e c t o n I n u n u n o l o g i c a l F u n c t i o n b y B e e P o l le n o f B r a s s i c a i n M i ce Z H A N G R o n g 一 b i a o , H E L i n , C H E N R u n , e t a l . ( F u j ia n C e n t e r f o r D i s e a s e C o

4、 n t r o l a n d P r e v e n t i o n , F u z h o u 3 5 0 0 0 1 , C h i n a ) A b s t r a c t : ) 场 e c t i v e T o i n v e s t ig a t e t h e in f lu e n c e o f B e e p o l le n o f B r a s s ic a o n im m u n e f u n c t io n s o f n o r m a l m ice. M e t h o d s日 e e p o lle n o f 日 r a s s ic a

5、 w e r e g iv e n o r a l ly t o B la b / c m ice f o r 3 0 d a y s w it h t h r e e d o s a g e g r o u p s o f 1 6 5 m g / k g , 3 3 0 m g / k g a n d 6 6 0 m g / k g , an d w a t e r w a s u s e d in c o n t r o l g r o u p . T h e f u n c t io n s o f n o n s p e c if ic im m u n it y , cell imm

6、 u n it y a n d h u m o r a l im m u n it y w e r e o b s e r v e d . R e s u l t s T h e r a t io o f s p le e n / b o d y w e ig h t in a l l d o s a g e g r o u p w a s s im ila r . T h e a p p r e c ia t io n a b il it y o f s p le e n ly m p h 一 cell u n d e r t h e d e r iv a t io n o f C o n

7、A in 6 6 0 m g / k g B W d o s a g e g r o u p h a d b e e n im p r o v e d . In b o t h 3 3 0 m g / k g B W g r o u p a n d 6 6 0 m g / k g B W g r o u p , in d e x e s in c lu d in g t h e r e s p o n s e o f d e la y e d h y p e r s e n s it iv it y , t h e p r o d u c t io n o f ant ib o d y 一 p

8、 r o - d u c in g c e l ls , t h e a m o u n t o f s e r u m h e m o ly t ic a n t ib o d y , t h e a b i l it y f o r c le a r a n c e o f c a r b o n , t h e a b i l it y f o r cel i a c m a c r o p h a g e p h a g o c y t o s is t o c h ic k e n r e d b lo o d cel l and t h e a c t iv it y o f N

9、K w e r e in c r e a s e d . C o n c l u s i o n B e e p o l le n o f B r a s s ic a is a b le t o im p r o v e t h e im m u n o lo g ic f u n c t io n o f m ic e . K e y w o r d s : B e e p o l le n o f b r a s s ic a ; Im m u n o lo g ic f u n c t io n ; E ff e c t 油菜蜂花粉( B e e p o ll e n o f b r

10、a s s i c a . B P B C ) 是一种良 好的天 然营养补品, 它具有多种药理作用, 其中许多方面与其增强免 疫功能有关 。 在医 药和食品工业上有着广泛用途。以 往关 于B P B C 免疫调节方面的文献报道较少, 也只从血清溶血素、 碳 廓清和腹腔巨噬细胞吞噬能力等两三个指标来研究B P B C 一 对正 常小鼠 免疫功能的影响 2 1 , 为更深人地了 解B P B C 对正常小鼠 免疫功能的影响, 我们除了测定以上几个指标外, 还通过小鼠 脏器/ 体重比 值、 细胞免疫功能、 体液免疫功能以及N K细胞活 J性 等各方面功能的测定对其免疫调节功能作了较为全面的研 究。现

11、报告如下。 1 材料与方法 1 . 1 B P B C 为褐色粉末, 由 福建农林大学提供, 临用前用蒸馏 水配成混悬液。 1 . 2 实验动物中国 科学院上海实验动物中心提供的清洁级 B A L B / 。 小鼠, 雌性, 体重为1 8 一2 2 g , 合格证号为S C X K ( 沪) 2 0 0 3 一0 0 0 3 0 作者单位: 1 福建省疾病预防控制中心( 福建福州3 5 0 0 0 1 ) ; 2 福 建省卫生厅卫生监督所 作者简介: 张荣标( 1 9 7 3 一) , 男, 福建福州人, 医师, 主要从事食品、 保健 品毒理及功能检测工作。 1 . 3 剂量选择 试验设B P

12、 B C 1 6 5 , 3 3 0 , 6 6 0 m g / 吨B W三个剂 量组及蒸馏水对照组。 1 . 4 给予受试物途径动物按2 . 0 m l / 1 0 0 g B W容积经口 灌胃。 1 . 5 仪器与试剂 1 . 5 . 1 仪器8 m m直径打孔器、 微量血凝试验板、 U n i v e r S a l 一 3 2 R台式中低速离心机、 B i o r a d 5 5 0 酶标仪、 %孔培养板、 F o r - m a 3 1 1 1 C O , 培养箱、 2 0 0目 筛网、 7 2 2 分光光度计、 O l y m p u s I X 7 0 一 S 8 7 一 2 倒

13、置显微镜、 B o n s o T e s 一 2 0 0 0 A电子称等。 1 . 5 . 2 试剂注射用印度墨汁、 刀豆蛋白A ( C o n A ) , M T T , D N F B 、 丙酮、 麻油、 S R B C 、 生理盐水、 鸡红细胞、 羊红细胞、 甲 醇、 G i 。染液、 Y A C : 一1 细胞、 H a n k s 液( p H 7 . 2 一7 . 4 ) , P R - M I 1 6 4 0 完全培养液、 乳酸铿、 碘硝基氯化四氮哩O N T ) 、 吩嗓二 甲 醋硫酸盐( P M S ) , N A D , T ri s 一 I C I 缓冲液( p H 8

14、 . 2 ) , 1 010 N P 4 0 、 台酚兰、 1 m o l/ L 盐酸、 酸性异丙醇等。 1 . 6 方法 1 . 6 . 1 非特异性免疫功能 1 . 6 . 1 . 1 小鼠脏器/ 体重比值( 胸腺指数和脾指数) 取小鼠 4 0 只, 随机分成4 组, 连续灌胃3 0 d 后, 称小鼠重, 并颈椎脱臼 法处死小鼠, 取出脾脏及胸腺, 用滤纸吸干血迹后称重。 万方数据 实用预防医学 2 0 0 5 年2 月 第1 2 卷 第1 期 P r a c t i c a l P r e v e n t iv e M e d ic in e , F e b . 2 0 0 5 , V

15、o l 1 2 , N o . 1 4 5 1 . 6 . 1 . 2 碳廓清实验测定 取小鼠4 0 只, 随机分成4 组, 连续 灌胃3 0 d 后, 称重, 从小鼠 尾部静脉注人稀释的印度墨汁, 注入 墨 汁 后2 , 1 0 m in , 分 别从内毗 静脉丛取血2 0 川 , 并立即 将其加 到2 m l 0 . 1 % N a z M 溶液中。 用7 2 1 分光光度计在6 0 0 nn 处 测光密度值( O D ) , 以N a t C 0 3 溶液作为空白 对照。 将小鼠处死 后解剖动物, 取出肝脏、 脾脏, 用滤纸吸干血迹后称重, 计算吞 噬指数a 【 吞噬指数a = 体重/

16、( 肝重+ 脾重) x 3 在; k = ( O D , 一 O D z ) / ( t 2 一 t , ) 。 1 . 6 . 1 . 3 小鼠 腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞实验( 半体内法) 取小鼠4 0 只, 随机分成4 组, 连续灌胃3 0 d 后, 每鼠腹腔注射 2 0 % 鸡红细胞悬液1 m l 。间隔3 0 m in , 颈椎脱臼处死动物, 将 其仰位固 定于鼠板上, 正中剪开腹壁皮肤, 经腹腔注人生理盐 水2 m l , 转动鼠 板1 m i n a 然后吸出腹腔洗液1 耐, 平均分滴于 2 片载玻片上, 放入垫有湿纱布的搪瓷盒内, 移置3 7 孵箱温 育3 0 m i n .孵毕

17、, 于生理盐水中漂洗, 以除去未贴片细胞。晾 干, 以1 : 1 丙酮甲醇溶液固定, 4 % ( v / v ) G i e m s a 一 磷酸缓冲液染 色3 m in , 再用蒸馏水漂洗晾干。在油镜下阅片计数, 计算吞噬 百分率 吞噬百分率( %) 二 吞噬鸡红细胞的巨噬细胞数/ 计数的 巨噬细胞数x 1 0 0 和吞噬指数 吞噬指数= 被吞噬的鸡红细胞 总数/ 计数的巨噬细胞数 。 1 . 6 . 1 . 4 N K细胞活性测定( L D H测定法) 取小鼠4 0 只, 随 机分成4 组, 连续灌胃3 0 d 后, 颈椎脱日法处死, 无菌取脾, 置 于盛有适量无菌H a n k s 液的

18、小平皿中, 用镊子轻轻将脾撕碎, 经2 0 0 目 筛网过滤, 制成单细胞悬液, 试验前2 4 h 将靶细胞传 代培养, 用前以H a n k s 液洗3 次, 用P R MI 1 6 4 0 完全培养液调 整细胞浓度为4 x 1 0 5 个/ m L 。用H a n k s 液洗涤脾细胞悬液2 次, 每次离心1 0 m in ( 1 0 0 0 r / m in ) 。弃上清将细胞浆弹起, 加入 0 . 5 m l 灭菌水2 0 s , 裂解红细胞后再加人0 . 5 m l 2 倍H a n k s 液 及8 m lH a n k s 液, 离心1 0 m in ( 1 0 0 0 r /

19、m in ) , 1 m l 完全培养液 重悬, 用 1 %冰醋酸稀释后计数, 台酚兰染色计数活细胞数( 应 在9 5 % 以上) , 调整细胞浓度为2 x 1 0 7 个/ M L 。取靶细胞和效 应细胞各1 0 0 风 ( 效靶比 为5 0 : 1 ) , 加人%孔培养板中; 靶细胞 自 然释放孔加靶细胞和培养液各1 0 0 闪 、 靶细胞最大释放孔加 靶细胞和1 9 6 N P 4 0 各1 0 0 讨 , 上述各项均设三个平行孔, 于3 7 C , 5 % C O , 培养箱中培养4h , 然后将培养板离心( 1 5 0 0 r / m in ) 5 m i n , 每孔吸 取上清液1

20、 0 0 川置于9 6 孔培养板中, 同时 加 人L D H基质液1 0 0 川 , 反应3 m i n , 每 孔加人1 m o l/ L 的H C L 3 0 j 1 , 在酶标仪4 9 0 n m处测 定光密度 值( O D ) , 计算N K细 胞活 性【 N K细胞活性( %) =( 反应孔 O D一自 然释放孔 ( ) D ) / ( 最大 释放孔O I 一自 然释放孔O D ) x .1 0 0 0 1 . 6 . 2 细胞免疫功能 1 . 6 . 2 . 1 C o n A 诱导的小鼠 淋巴细胞转化实验( M T I , 法) 取 小鼠4 0 只, 随机分成4 组, 连续灌胃3

21、 0 d 后, 颈椎脱臼法处死, 无菌取脾, 置于盛有适量无菌H a n k s 液的小平皿中, 用镊子轻 轻将脾撕碎, 经2 0 0目 筛网过滤, 制成单细胞悬液, 用H a n k s 液 洗涤细胞悬液2 次, 每次离心1 0 m in ( 1 0 0 0 r / m in ) , 然后将细胞 悬浮于1 r n l 的完全培养液中, 台酚兰染色计数活细胞数( 9 5 以上) , 调整细胞浓度为3 x 1 护个/ ML 。将每份细胞悬液分两 孔 加人2 4 孔培 养板中, 每孔1 m l , 一孔加7 5 p 1 C o n A 液, 另一 孔为对照, 置培养箱中培养7 2 h o培养结束前

22、4h , 每孔吸去上 清液0 . 7 m l , 加人0 . 7 m l 不含小牛血清的R P MI 1 6 4 0 培养液, 同 时 加 入M T T 5 0 浏孔, 继 续 培 养4 h 。 培 养 结 束 后, 每 孔 加 入 1 m l 酸性异丙醇, 吹打混匀, 使紫色结晶完全溶解。然后分装 到9 6 孔培养板, 每孔做3 个平行孔, 用酶标仪以5 7 0 n m波长测 定光密度值。 1 . 6 . 2 . 2 迟发型变态反应( D T H ) 检测取小鼠4 0 只, 随机分 成4 组, 连续灌胃3 0 d 后, 每鼠腹部皮肤用电动剃毛刀进行脱 毛 处理, 范围 约3 c m x 3

23、c m , 后用D N F B 溶液5 0 风均匀涂抹 致 敏; 5 d 后, 再用D N F B 溶液1 0 讨均匀涂 抹于 小鼠 右耳两面 进 行攻击; 2 4 h 后颈椎脱臼处死小鼠, 剪下左右两耳, 用打孔器取 下直径8 m m的耳片称重, 计算左右耳重量差值。 1 . 6 . 3 体液免疫功能 取小鼠4 0 只, 随机分成4 组, 连续灌胃 3 0 d 后, 每鼠 腹腔注射2 % ( V / V ) S R B C 悬液0 . 2 r n l 进行免疫。 5 d 后, 取小鼠眼球血做血清溶血素检测, 并将动物颈椎脱臼处 死, 取脾脏进行抗体生成细胞检测。 1 . 6 , 3 . 1

24、抗体生成细胞检测取出脾脏后, 将脾细胞悬浮于 8 m L H a n k s 液中。将表层培养基加热溶解后, 放入4 5 水浴 保温, 与等量的p H 7 . 2 - - 7 . 4 , 2 倍浓度的H a n k s 液混合, 分装小 试 管, 每 管0 . 5 m l , 再向 管内 加人5 0 闪1 0 % S R B C , 2 5 川脾细 胞悬液, 迅速混匀, 倾倒于已刷琼脂薄层的6 c m平皿上, 放人 C q培养箱中温育1 . 5 h , 然后用S A缓冲液稀释的补体加入, 继续温育1 . 5 h 后, 计数溶血空斑数。 1 . 6 . 3 . 2 血清溶血素测定( 血凝法) 将

25、小鼠眼球血于2 0 0 0 r / m in 离心1 0 m in 分离血清, 用生理盐水将血清倍比稀释, 将不 同 稀释度的 血清分别置于微量血凝板内, 每孔1 0 0 川 , 再加人 1 0 0 tr 1 0 . 5 % ( v / v ) 的S R B C 悬液, 混匀, 装人湿润的 平盘内 加盖, 于3 7 温箱孵育3 h , 观察血球凝集程度( 用抗体积数表示) 。 1 . 7 实 验数据统计方法实验数据以S P S S 软件进行单因素 方差分析。 2 结果 2 . 1 B P B C对正常小鼠非特异性免疫功能 2 . 1 . 1 B P B C 对正常小鼠脏器/ 体重比值的影响 B

26、 P B C各剂 量组与对照组相比, 均无显著性差异( P 0 . 0 5 ) , 结果见表t o 2 . 1 . 2 B P B C对正常小鼠碳廓清的影响B P B C的3 3 0 , 6 6 0 m 创 吨B W剂量组对小鼠 碳廓清能力增强作用大于对照组, 差 异呈显著性( P 0 . 0 5 ) , 并且有剂量效应关系。 结果见表t o 2 . 1 . 3 B P B C对正常小鼠腹腔巨噬细胞吞噬能力的影响 B P B C 的3 3 0 , 6 6 0 m g / 吨B W剂量组对小鼠 腹腔巨噬细胞吞噬 能力的增强能力大于对照组, 差异呈显著性( P 0 . 0 5 ) , 并且有 剂量

27、效应关系。结果见表t o 2 . 1 . 4 B P B C对正常小鼠N K细胞活性的影响 B P B C的3 3 0 , 6 6 0 m g / 掩 B W剂量组对小鼠N K细胞活性的增强能力大于对 照组, 差异呈显著性( P 0 . 0 5 ) , 并且有剂量效应关系。结果见 表 1 o 万方数据 4 6实用预防医学 2 0 0 5 年2 月 第1 2 卷 第1 期 P r a c t ic a l P r e v e n t i v e M e d i c i n e , F e b . 2 0 0 5 , V o l 1 2 , N o . 1 表1 B P B ( : 对正常小鼠脏器

28、/ 体重比值、 碳廓清、 腹腔巨噬细胞吞噬能力、 N K细胞活性的影响 n = 1 0 , 王 士 : ) 组 别 对照组 1 6 5 m g / 掩B W 3 3 0 m g / 掩B W 6 6 0 m g / 吨B W 胸腺指数( %) 0 . 1 7 士0 . 0 3 0 . 1 6 士0 . 0 2 0 . 1 7 士0 . 0 2 0 . 1 7士0 . 0 3 脾指数( %) 0 . 4 1士0 . 0 4 0 . 4 1 士0 . 0 6 0 . 4 1 士0 . 0 7 0. 3 9士0. 0 7 吞噬指数 a 3 . 2 2士0 . 5 2 3 . 4 7 士0 . 8 6

29、 4 . 0 5 1 0 . 9 5 1 5 . 6 6 士0 . 9 5 1 ) 吞噬率( %) 1 0 . 0 0 士2 . 4 7 9 . 7 5 士2 . 1 8 1 3 . 2 0 士 2 . 7 1 1 ) 1 5 . 9 5 士 2 . 0 9 1 ) 吞噬指数 0 . 1 4士0 . 0 3 0 . 1 5 士0 . 0 2 0 . 2 1 士 0 . 0 2 1 ) 0 . 2 3 士 0 . 0 3 1 ) N K细 胞活性( %) 2 1 . 0 2 土2 . 2 3 2 3 . 6 5 士3 . 8 4 2 4 . 8 4 上 3 . 9 5 1 ) 1 4 0 . 1

30、 士1 8 . 3 1 ) 注: 1 )与对照组比, P 0 . 0 5 2 . 2 B P B C对正常小鼠细胞免疫功能的影响 2 . 2 . 1 B P B C 对C o n A 诱导的正常小鼠 脾淋巴细胞转化的影响 B P B C的6 6 0 m g / 吨B W剂量组的淋巴细胞增殖能力高于对 照组, 差异呈显著性( P 0 . 0 5 ) , 并且有剂量效应关系。结果见 表 2 0 2 . 2 . 2 B P B C 对正常小鼠 迟发型变态反应水平( D T H ) 的影响 B P B C 的3 3 0 , 6 6 0 m 目 吨B W剂量组对小鼠 迟发型变态反应 水平高于对照组, 差

31、异呈显著性( P 0 . 0 5 ) , 并且有剂量效应关 系。 结果见表2 a 表2 B P B C对正常小鼠脾淋巴细胞转化和D T H的影响( n =1 0 , 厌 士 : ) 组 别 对照组 左右耳肿胀度差( m g ) 1 6 5 m g / 掩B W 3 3 0 m g U B W 6 6 0 n 习城B W ( 卫 值差值2 ) 0 . 0 1 8士0 . 0 2 2 0 . 0 2 3士0 . 0 1 7 0 . 0 2 6 士0 . 0 1 5 0 . 0 3 8 士 0 . 0 2 4 1 ) 1 8 . 1 士5 . 3 2 2 . 7 士2 . 2 2 4 . 5 士2

32、. 3 1 ) 2 8 . 8 士 4 . 3 1 ) 注: 1 ) 与对照组比, P 0 . 0 5 ; 2 ) 表示脾淋巴 细胞的增殖能力 表3 B P B C对正常小鼠抗体生成细胞和血清溶血素的影响 ( n = 1 0 , x士、 ) 组 别 对照组 1 6 5 r n g l 吨B W 3 3 0 m g l 掩B W 6 6 0 m g l 橄B W 溶血空斑数( x 1 0 3 个/ 全脾)抗体积数 2. 7 8士0. 6 0 3. 0 4士0. 6 4 4 . 2 6 士 0 . 7 1 1 ) 5 . 6 6 士 0 . 9 5 1 ) 7 2 . 3 士1 0 . 6 8 2

33、 . 6士1 2 . 0 1 1 2 . 8 士1 5 . 7 1 ) 1 4 0 . 1 士 1 8 . 3 1 ) 注: 1 )与对照组比, P 0 . 0 5 2 . 3 B P B C对正常小鼠体液免疫功能的影响 2 . 3 . 1 B P B C对正常小鼠抗体生成细胞的影响 B P B C的3 3 0 ; 6 6 0 m g / 掩B W剂量组对小鼠 抗体生成细胞的 生成作用大于对 照组, 差异呈显著性( P0 . 0 5 ) , 并且有剂量效应关系。结果 见表 3 0 2 . 3 . 2 B P B C对正常小鼠血清溶血素的影响B P B C的3 3 0 , 6 6 0 m g /

34、 吨B W剂量组对小鼠 血清溶血素含量升高作用大于对 照组, 差异呈显著性( P 0 A5) , 并且有剂量效应关系。结果 见表 3 0 3 讨论 B P B C 为蜜蜂采自 油菜花的一种天然花粉, 具有复杂的化 学成分和广泛的生物学效应。B P B C含有人体必需的氨基酸、 核酸、 维生素和微量元素, 是一个完全的微营养库。已有文献报 道, B P B C 具有抗氧化、 抗疲劳、 调节血脂、 延缓细胞衰老和促进 细 胞再生3 ,4 1 、 抑制体内外脂质过氧化等作用 5 。医学研究表 明: 机体组织细胞的凋亡、 疾病的发生或多或少都与机体免疫系 统的结构组成和免疫功能有关, 如果正常机体的免

35、疫系统不能 对细胞的凋亡进行调控, 相应组织器官就会发生病变, 如肿瘤, 又如爱滋病和乙肝等疾病也均为机体免疫系统受累导致免疫功 能低下所致, 所以, 通过提高患者免疫功能来增强机体抗病力的 治 疗方法受到了 前所未有的 关注6 。 从这个意义上说, 若能 对 免疫功能处于低下的小鼠 作进一步的研究, 那将使该研究更为 全面。 从以上我们对B P B C进行的免疫调节功能研究结果发现, B P B C各剂量组对小鼠脏器/ 体重比值均无影响, 从理论上讲, 胸 腺、 脾脏均是机体重要的免疫器官, 能增强免疫功能的物质, 一 般会使胸腺指数、 脾指数均有所增加, 而试验结果却是无影响。 这可能与所

36、选动物的品系有关, 同时也说明B P B C 对正常小鼠 非特异性免疫功能的该项指标影响相对偏弱; 6 6 0 m 创 吨B W 剂量组能增强C o n A 诱导的脾淋巴细胞增殖能力; 3 3 0 , 6 6 0 m g / 掩B W剂量组均能明显增强D N F B 诱导的迟发型变态反应水 平、 促进抗体生成细胞的生成、 增强小鼠N K细胞活力, 并且能 提高小鼠 血清溶血素抗体积数水平、 增强小鼠 碳廓清能力, 增强 小鼠巨噬细胞吞噬鸡红细胞的能力。本实验对后面几项指标测 定 结果与 文献报道的 结果基本一致2 7 。 这些表明, B P B C 对正 常小鼠 机体非特异免疫功能、 体液免疫

37、功能、 细胞免疫功能均有 一定的增强作用。 综上所述, 可提示B P B C 对正常机体免疫功能具有一定增 强作用。为B P B C的 综合开发利用提供了可靠的实验依据。 究 其作用的功效成分最可能就是总黄酮和粗多糖。 经我们检测这 两种成分的含量很高, 至于它们具体的作用机制还有待于进一 步研究。当然, 也有人说, B P B C中所含的钦也是其具有免疫增 强作用的原因之一, 这得加以考证。 参考文献 1 余金牛. 蜂花粉的免疫增强作用 1 l . 中国实验临床免疫学杂志, 1 9 9 0 , 2 ( 2 ) : 4 1 一 4 4 . 2 许子俊. 油菜蜂花粉对小鼠免疫功能的影响【 1 l

38、西北药学杂志, 1 9 9 3 , 8 ( 1 ) : 2 4 一 2 6 . 3 史伯伦. 新的 长寿因子 Ml . 第1 版. 北京: 北京农业出版社, 1 9 9 0 . 6 2一7 4 . 4 许子俊. 高原B P B C的 抗缺氧研究【 J l . 高原医学杂志, 1 9 9 1 , 1 : 2 0 . 5 钱伯初. 蜂花粉对小鼠体内外脂质过氧化的影响【 1 l . 营养学报, 1 9 8 9 , 1 1 ( 4 ) : 3 5 5 : 6 朱荣丽. 海藻甲醇提取物免疫调节作用的初步研究【 J l . 中国免疫学 杂志, 2 0 0 3 , 1 9 ( 1 0 ) : 6 6 9 一 6 7 6 . ( 收稿日 期: 2 0 0 4 -1 0 - 0 8 ) 万方数据

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