大口黑鲈弹状病毒检测方法.pdf

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1、DB 41/T XXXXXXXX7AA 附录A(规范性)大口黑鲈弹状病毒检测方法A.1原理大口黑鲈弹状病毒病(Micropterus salmoides rhabdovirus,MSRV)主要感染鲈的一种水生动物病毒,死亡率约为50 %70 %。建立检测鲈弹状病毒的多种检测,适用于大口黑鲈弹状病毒的监测。本方法规定了从水生动物检测大口黑鲈弹状病毒的分离和RT-PCR方法,适用于水生动物中大口黑鲈弹状病毒的检测。A.2 试剂与材料A.2.1水:符合GB/T 6682中一级水的规格。A.2.2细胞系:FHM、 EPC。A.2.3 75%乙醇:用新开启的无水乙醇和DEPC水配制,-20 预冷。A.2

2、.4Taq DNA酶:-20 保存,不要反复冻融或温度剧烈变化。A.2.5dNTPs:含dCTP、dGTP、dATP、dTTP各2.5 mmol/L。A.2.6RNA酶抑制剂:-20 保存,避免温度剧烈变化。A.2.7逆转录酶:-20 保存,避免温度剧烈变化。A.2.8RT-PCR用引物,浓度为20 mmol/L,序列如下:oPVP141:5-GAWWTCTGTTAAAGTTTTTTTC-3oPVP143:5-TGGATATGTTCTACTTCCACTTCA-3,扩增PRV糖蛋白基因中大小约为400 bp的片段。A.3仪器与设备A.3.1组织研磨器或无菌研钵。A.3.2恒温培养箱。A.3.3倒

3、置荧光显微镜。A.3.4PCR扩增仪。A.3.5水平电泳仪。A.3.6凝胶成像仪。A.3.7普通冰箱和-80 超低温冰箱。A.3.8降温离心机。A.3.9微量移液器。A.3.10二级生物安全柜。A.4样品和靶器官的采集DB 41/T XXXXXXXX8样品包括活的、发病的、濒死的鱼和鱼卵,采样数量按照GB/T 18088规定执行。体长小于4 cm的鱼苗取整条鱼;4 cm6 cm的鱼苗取肾脏在内的所有内脏;体长大于6 cm的鱼取脑、脾和肾。实验室检测条件应符合GB 19489的规定。A.5小样的制备及处理最多以10条鱼为一个小样,每个小样至少取0.5 g组织。对组织称重后,用无菌手术剪刀将其剪碎

4、并研磨成糊状,用细胞培养液1(附录A.1)按照10 mL/g比例将研磨后的组织重悬(将此组织液称为1:10稀释度)。4 孵育过夜。4 、12000 r/min离心15 min,取上清用于后续实验。A.6 诊断方法A.6.1病毒分离A.6.1.1单层细胞的制备用胰酶EDTA消化液消化EPC或FHM细胞后,用细胞培养液2重悬细胞,加入细胞培养板,25 培养,使细胞生长至单层。A.6.1.2接种细胞将以上三个不同稀释度的组织上清液分别接种至新鲜的EPC或BF-2单层细胞,每个稀释度至少3孔,每孔中组织上清液与细胞维持液的比例为1:10。同时,设立阳性对照和空白对照,阳性对照孔中接种PRV参考株,空白

5、对照孔中接种相同体积细胞培养液2。25 培养,倒置显微镜下连续观察7 d10 d。A.6.1.3盲传首次接种细胞7 d10 d后未出现CPE,需进一步盲传。将细胞培养物反复冻融3次,收集至无菌离心管。4 、7000 r/min离心15 min或用直径0.45 nm滤器滤除细胞碎片,取上清。用细胞培养液2将上清液稀释至1:10和1:100,将上清液、1:10和1:100稀释液接种于新鲜的EPC或BF-2单层细胞,至少3孔,组织上清液接种量与孔内细胞培养液比例为1:10。同时,设立阳性对照和空白对照。25 培养,倒置显微镜下连续观察7 d10 d。A.6.1.4结果判定PRV 感染 EPC 细胞后

6、,可出现典型 CPE,表现为局部细胞变圆、皱缩和裂解,以此为中心周围细胞的病变范围扩大,形成明显空斑,最终细胞呈拉网状直至全部悬浮脱落。若样品首次接种细胞或盲传后细胞出现典型 CPE,则判定为阳性。若样品盲传后细胞仍未观察到 CPE,则判定为阴性。若阳性对照或空白对照不成立,换用敏感细胞,需重新实验。A.6.2逆转录聚合酶链式反应(RT-PCR)A.6.2.1对照设立从核酸抽提起,每步实验均需要设立阳性对照、阴性对照和空白对照。用PRV的病毒悬液作为阳性对照,用正常细胞悬液作为阴性对照,以DEPC水代替样品作为空白对照。A.6.2.2核酸抽提DB 41/T XXXXXXXX9取细胞培养物250

7、 L至无RNA酶的1.5 mL离心管,加入600 L Trizol溶液,剧烈震荡混匀后,室温放置5 min。加200 L氯仿,盖紧盖子,剧烈摇动15 s,室温放置3 min。4 、12 000 r/min离心15 min。吸取上清至新的无RNA酶离心管,加入500 L预冷的异丙醇,上下翻转混匀,室温放置10 min。4 、12 000 r/min离心15 min。缓慢弃上清,将离心管倒置于吸水纸上,将液体去除。加入1 000 L预冷的75 %乙醇缓慢倒转洗涤沉淀。4 、12000 r/min离心15 min,弃上清,将离心管倒置于吸水纸上,室温干燥沉淀5 min10 min。加入20 L DE

8、PC水,4000 r/min离心5 s,室温溶解10 min。-80 保存备用。在实验过程中,可采用同等效果的商业化RNA抽提试剂盒代替以上方法。A.6.2.3反应体系10PCR buffer 5L,25 mmol/L MgCl2 5L,2.5 mmol/L dNTPs 4 L,20 mol/L引物F1和R1各 2.5L,5 U/L DNA聚合酶 0.5L,5 U/L逆转录酶 1L,40 U/L RNA酶抑制剂 1 L,总RNA 5L,加DEPC水至总体系50L。每个反应体系设置两个平行。A.6.2.4反应条件50 逆转录30 min;95 预变性5 min;95 变性30 s,45 退火25

9、 s,72 延伸20 s,共40个循环;72 再延伸10 min;4 保存。A.6.2.5琼脂糖电泳用TBE电泳缓冲液配制浓度为1.5 %的琼脂糖(含0.5 g/mL溴化乙锭凝胶板)。将其放入水平电泳槽,使电泳缓冲液没过胶面。将5L PCR产物与1L 6上样缓冲液(见附录A.7)混匀后加入样品孔,5 V/cm电泳约40 min,当溴酚蓝到达凝胶板3/4处时停止,置于凝胶成像仪观察结果。电泳时,设立DNA标准分子量对照。A.6.2.6测序对RT-PCR扩增产物进行基因测序,并将测序结在Genbank进行比对分析。A.6.2.7结果判定阳性对照可扩增出一条大小约为 400 bp 的特异性条带,阴性

10、对照和空白对照无大小为 400 bp的条带。若阳性对照、阴性对照或空白对照不成立,则需要重新实验。若被检样品扩增出大小约为 400 bp 的特异性条带,且基因测序结果正确,则判定为阳性。若被检样品未扩增出大小约为 400 bp 的条带,则判定为阴性。A.7综合判定A.7.1满足以下任何一条均可判定为MSRV可疑:样品为MSRV易感鱼类且具有典型临床症状。样品为MSRV易感鱼类且具有典型、明显的组织病理变化。病毒分离方法可见明显细胞病变。RT-PCR方法检测结果为阳性。A.7.2在A.7.1的基础上,满足以下任何一条均可判定为MSRV阳性:病毒分离出现典型、明显细胞病变,且用 RT-PCR 方法检测细胞培养物为阳性。RT-PCR 方法检测为阳性。

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