常用标本的采集及检查前后的护理-文档资料.pptx

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1、目录 1、血标本采集 2、血培养标本采集 3、血气分析标本采集 4、尿标本采集 5、便标本采集 6、呼吸道标本采集 7、导管培养标本采集,一、血标本采集,(一)、评估和观察要点: 1、评估患者病情、意识及合作程度,空腹取血要了解是否空腹 2、评估穿刺部位皮肤,血管情况及肢体活动度。,(二)、操作要点: 1、取下采血管的同时立即将该采血管轻轻颠倒混匀58 次(抗凝血),使试管内预置的添加剂与血样充分混匀,但不可剧烈摇晃以免造成标本溶血。,2、标本采集后应尽快送至实验室,若不能及时送检,已采集的标本要按检验规定的贮存条件; 3、标本运送要注意防止标本外溢、蒸发和污染,用有盖容器采集、运送标本(带生

2、物安全标识的运送箱);,4、采集的标本运送到实验室,要共同核对标本来源、标本属性、检查项目、标本采集和运送是否合乎要求等,标本送出人员和标本接收人员都要做认真的记录并签字存档。,5、检验科专人接收标本,不合格标本退回,运送工人条码扫描 入库, 只要入库的标本就可查寻(包括病人信息、检查项目、入库时 间等),(三)采血注意事项,空腹以应禁食12小时14小时采集标本(空腹以晚上6点至第二天早上8点) 避免剧烈运动 采血前4h勿喝茶或咖啡、勿吸烟喝酒。 微生物培养最好在使用抗生素之前。 若患者正在输液治疗,应从非输液侧采集。 同时采集多种血标本时,根据采血管说明书要求依次采集血标本。 采血时尽可能缩

3、短止血带的结扎时间。 标本采集后尽快送检,送检过程中避免过度震荡。,常用采血管,最后一管应在取下试管后拔出采血针,以防血液返流,正确贴条形码,专用血气采集针,标本不合格原因: 1.溶血; 2.凝血; 3.标本量不足; 4.空管; 5.抗凝剂/血量比例错误; 6.乳糜血; 7.标本容器错误;,8.采样时间错误; 9.标本类型错误; 10.运输时间不合格; 11.运输条件不合格; 12.标本丢失或未收到; 13.标本容器损坏; 14.标本污染; 15.其它。,二:血培养标本采集,(一)、评估和观察要点: 1、评估患者病情、治疗、心理状态及合作程度, 2、评估穿刺部位皮肤,血管情况及肢体活动度, 3

4、、了解寒战和发热的高峰时间, 4、了解抗生素使用情况。,(二)、操作要点: 1、注射器直接穿刺采血。 2、经外周穿刺的中心静脉导管取血:取1支注射器抽20ml0.9%NS备用,另备2支注射器,连接1支注射器,抽5ml血液弃去,如正在输液,先停止输液20S,另接1支注射器抽足够的血标本。用20ml0.9%NS脉冲式冲管,消毒导管口,清除残留血迹。 常规血培养不宜从静脉导管或静脉留置装置中采集,检出污染或定植菌的可能性较大。除非怀疑导管相关性血流感染,请参照导管相关性血流感染的采血方法。3、,3、成人每次采集10-20ml,婴儿和儿童1-5ml。采血量不足时应优先保证需氧瓶,因临床90以上的血流感

5、染为需氧菌或兼性需氧菌感染。 血培养物每增加一毫升,真性菌血症成年人微生物的检出率增加3。但并非越多越好,超过一定数量的采血量会稀释培养瓶内的肉汤,使肉汤无法有效中和血中的抑制物质(补体、抗体、抗生素)。所以血液与肉汤的最佳比例为1:41:10 4、用75%酒精消毒血培养瓶橡皮塞子60秒。自然待干。将标本注入培养瓶内。颠倒混匀标本与培养液,以避免血液凝集。,(三)采血注意事项 1、血培养瓶应在室温下避光保存。 2、根据是否使用过抗生素,准备合适的需氧瓶和厌氧瓶。 3、尽可能在患者寒战或开始发热时采血 4、在患者接受抗生素治疗前采血。如患者已经应用抗菌药物进行治疗,应在下一次用药之前采血培养 5

6、、血标本注入厌氧菌培养瓶时,勿将注射器内空气注入瓶内。 6、2次血培养采血时间至少间隔1小时。 7、经外周穿刺的中心静脉导管取血时,每次至少采集2套血标本,其中一套从独立外周静脉采血。两套采血时间必须接近(小于5分钟),并做好标记。,1、血培养阳性率与体温变化的相关性不大,最重要的是临床须遵从“用药前” 采血!,2、在使用抗生素之前采血,阳性率是用药后采血的 2.2 倍! 3、成人“一套” 血培养应该包括需氧瓶和厌氧瓶各一个,也叫“一份”。 4、注意:一次穿刺采血,算“一套”,采集第二套应从另一个穿刺点获得。 5、儿童一般可只做需氧培养,但仍需从多个部位采集多次。特殊患者必须考虑厌氧培养。,三

7、:血气分析标本采集,(一)、评估和观察要点: 1、评估患者体温、吸氧状况或患者呼吸机参数的设置, 2、评估穿刺部位皮肤,动脉搏动情况。,(二)、操作要点: 1、患者取坐位或卧位,暴露穿刺部位(选择桡动脉及股动脉)。 2、用血气专用针采血。 3、选择并消毒穿刺皮肤及操作者的食指、中指,以2指固定动脉搏动最明显处,持注射器在2指间垂直或沿动脉走向呈40角刺入动脉,采血1ml。 4、拔针后立即将针尖斜面刺入无菌橡皮塞。压迫穿刺点5-10分钟。 5、轻轻转动血气针,使血液与抗凝剂充分混匀,防止凝血。,(三)采血注意事项 1、洗澡、运动后休息30分钟再采血。 2、标本应与空气隔绝,避免混入静脉血和气泡。

8、 3、凝血功能障碍者穿刺后延长压迫时间至少10分钟。 4、采集标本后30分钟内送检。,四:尿标本采集,(一)、评估和观察要点: 1、排尿情况及配合程度。 2、女性患者是否在月经期,若在月经期,则不宜留取尿标本。,(二)、操作要点: 1、晨尿:晨起第一次尿液的中段尿放入清洁容器内。 2、尿定量检测:将规定时间内的尿液装入含防腐剂的洁净容器内,混匀后记录总量,取100-200ml送检。 3、尿胆原检测:以留取14:00-16:00时间段的尿液为宜。 4、尿培养标本检测: (1)中段尿采集法:要求在膀胱内保留4-6小时以上,用清水冲洗会阴,用灭菌水冲洗尿道口。排尿,留中段10ml于灭菌容器内送检。,

9、(2)尿管尿液采集法:尿储留患者导尿弃去前段,留取10-15ml于灭菌容器内送检。留置导尿患者先夹闭尿管30S,消毒导尿管外部及尿道口,用注射器从导尿管抽取尿液,防止带入消毒剂,长期导尿者,应在更换导尿管后留取尿标本。,(三)注意事项 1、会阴部分泌物过多时,应先清洁或冲洗会阴后再留取。 2、避免经血、白带、精液、粪便或其他异物混入标本。 3、选择在抗生素使用前留取尿培养标本。 4、不能留取尿袋中的尿液送检。 5、留取尿标本前不宜过多饮水。 6、尿标本留取后要及时送检。,五:便标本采集,(一)、评估和观察要点: 1、评估患者病情、治疗、排便情况及配合程度。 2、女性患者是否在月经期。,(二)、

10、操作要点: 1、自然排便后留取便标本。 2、采集标本时,应选取中央部分或有粘液、脓血部分。 3、检查蛲虫卵:清晨排便后由肛门周围拭取,立即镜检。 4、找寄生虫或虫卵计数:采集24小时便。 5、便隐血试验:检查前3天禁食肉类、肝类、并禁服铁剂。 6、检查阿米巴原虫,应在采集前用热水将容器加温,便后连同容器一起送检。,(三)注意事项 1、灌肠后的粪便、粪便过稀混有甘油,不宜做为留检标本。 2、便标本应新鲜,不可混入尿液及其他杂物。,六:呼吸道标本采集,(一)、评估和观察要点: 1、评估患者年龄、病情、治疗、排痰情况及配合程度。 2、评估患者口腔黏膜有无异常。 3、观察痰液的颜色、性质、量、分层、气

11、味、粘稠度及有无肉眼可见的异常物质等。,(二)、操作要点: 1、自行咳痰采集法:晨痰为佳,用冷开水漱口,深吸气后用力咳出呼吸道深部痰液,标本量不少于1ml,痰少者可用生理盐水雾化后将痰咳出。 2、难于自然咳痰、不合作、人工辅助呼吸者:将患者取舒适卧位,先叩击患者背部,然后将集痰器与吸引器连接,抽吸痰液2-5ml。 3、气管镜采集法:协助医生在气管镜检查下,直接采集标本。,4、咽拭子采集法:患者用清水漱口,取出无菌试子蘸取少量无菌生理盐水,用压舌板轻压舌部,迅速擦拭患者口腔两侧腭弓及咽、扁桃体的分泌物,避免咽拭子触及其他部位,迅速吧把咽拭子插入无菌试管塞紧。 5、24小时痰采集:在广口集痰瓶内加

12、少量清水。患者起床后进食前漱口后第一口痰开始留取,次日晨起床后进食前漱口后第一口痰结束,全部留入集痰瓶内,记录痰标本总量、外观和性质。,(三)注意事项 1、除24小时痰外,痰标本收集时间应选择早上。 2、查痰培养及肿瘤细胞的标本应立即送检。 3、避免在进食后2小时内留取咽拭子标本,以防呕吐,棉签不要触及其他部位,以免影响检查结果。,七:导管培养标本采集,(一)、评估和观察要点: 1、评估患者病情、导管局部皮肤情况。 2、了解导管留置时间。 3、评估穿刺部位皮肤情况及肢体活动度。,(二)、操作要点: 1、采集血培养标本2套,一套从可疑感染的导管采集,另一套从独立外周静脉采集。 2、协助患者摆放体位,使导管穿刺点位置低于心脏水平。 3、缓慢移出导管,迅速按压穿刺点、检查导管尖端是否完整。 4、用灭菌剪刀剪下导管尖端和皮下部分,分别置于无菌试管内塞紧,注明留取时间。,(三)注意事项 1、采集标本时间最好在使用抗生素之前。 2、留取导管标本应与留取血培养标本同时进行,采集时间应在3分钟内完成。,临床标本的采集和运送直接关系到检验结果的准确性,在标本采集、运输等各个环节都要规范操作、严格控制,这是确保检验结果准确可靠的前提。 没有一个合格的标本 就不可能有一个准确的结果,谢谢聆听!,

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