同源建模详细讲解-整理版.ppt

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1、西大Song 2013.5.3,结构生物学与同源建模,报告内容,1、同源建模的基础-结构生物学 2、蛋白质结构预测之同源建模 3、同源建模的基本步骤 4、同源建模常用软件介绍-在线服务器 5、同源建模常用软件介绍-Modeller 6、模型质量检测,1、结构生物学,结构生物学是以生物大分子特定空间结构、结构的特定运动与生物学功能的关系为基础,来阐明生命现象及其应用的科学。 以生物大分子三级结构的确定作为手段,研究生物大分子的结构与功能关系,探讨生物大分子的作用机制和原理作为研究目的。,三维结构,折叠,进化关系,晶体或高浓度溶液中蛋白质的四级结构,突变、单核苷酸及保守残基的分布,蛋白质配体复合物

2、,不同基团的相关性,形态和静电属性,表面残基暴露与分子构成,推测相互作用界面,晶胞堆积,抗原位点及表面修饰,缝隙(酶活性位点),催化簇/结构功能motif催化机制,配体和功能位点,生物 多聚态,总结来说,三维结构,功能,作用机制,分子间互作,功能注释,指导实验 验证功能,确认功能位点,设计和改造 蛋白,药物靶标设计,X- 射线晶体衍射(X-ray),多维核磁共振( NMR ),冷冻电子显微镜,结构生物学主要研究方法,高浓度水溶液 精确度X-ray,晶体,准确度最高,细胞和细胞器,PDB数据库,蛋白质数据库(Protein Data Bank,PDB)是一个生物大分子(如蛋白质和核酸)数据库,

3、内容包括由全世界生物学家和生物化学家上传的蛋白质或核酸的X光晶体衍射或者NMR核磁共振结构数据。 截止2013.4.28,PDB数据库已测结构的蛋白质87368,而该库中包含的一级序列有2200W。 通过实验测定的蛋白质结构远远不能满足研究需要,于是蛋白质结构预测就成为研究结构生物学的一个有效手段。,蛋白质结构预测之同源建模,蛋白质结构预测方法: 同源建模,折叠识别和从头计算。 同源建模基本原理: 1、一个蛋白质的结构由其氨基酸序列唯一的决定。由一级结构,在理论上,足以获取其二级、三级结构。 2、三级结构的保守型远远大于一级结构的保守型。 应用限制:模板蛋白和目标蛋白的序列一致性需要大于30%

4、,同源建模的基本步骤,1、模板蛋白搜索 PDB数据库、BLAST(或PSI-BLAST) 、获取模板(一个或多个) 2、比对结果的校正 3、主链生成 4、环区建模 5、模型优化 6、合理性检测,同源建模在线服务器,Swiss-model,I-TASSER,HOMCOS 1.0,ESyPred3D,同源建模软件,图形化软件,Pymol,PDB-viewer,Jmol,Rasmol,SWISS-MODEL,SWISS-MODEL: 网址http:/swissmodel.expasy.org/ 非专业人士应用最为广泛的一个在线建模服务器。 特点:简单、自动化、对学术团队免费。,Automated m

5、ode,Automated mode:自动模式,可以称为是最傻瓜的方式 提交自己的氨基酸序列+邮箱即可 适用:一致性较高时,邮箱,模型命名,氨基酸序列,Swiss-port/TrEMBL登录号,Alignment mode,Alignment mode: 比对模式 提交目标蛋白与模板蛋白的序列比对结果(FASTA,MSF,ClustalW等格式) 适用:1、较高的相似性 2、利用Auto模式未必能找到最合适模板的情况 3、使用者有目的的使用特定的模板蛋白 (比如具有更为相似的活性位点结果,而不是更为相似的整体结构),邮箱,模型命名,比对后的序列,比对文件,Project mode,Projec

6、t mode:项目模式 难以直接通过序列比对获得模板 需要人工插入调节(借助蛋白结构编辑软件deepview) 可以将前两种模式模建出的蛋白进行人为调整 适用:相似性不高,I-TASSAR,I-TASSAR: http:/zhanglab.ccmb.med.umich.edu/I-TASSER/ *也可以下载本地安装包 评价:根据结果质量检验,该服务器应该是自动建模的软件里是结果最详细的,二级结构、top10模型、配体结合位点等等。 缺点:计算结果时间比较长 结果需要进一步优化,HOMCOS 1.0,HOMCOS 1.0:http:/strcomp.protein.osaka-u.ac.jp/

7、homcos/,同源二聚体建模,异源二聚体建模,识别可能的互作蛋白,ESyPred3D,ESyPred3D :http:/www.unamur.be/sciences/biologie/urbm/bioinfo/esypred/ 评价:自动建模预测服务程序,ESyPred3D在目标-模板比对这一步做出的结果较好,且在预测序列与模板序列相似度差时有较好的模型预测效果。,Modeller,该软件由Sali lab开发,目前最新的版本是9.11,可在win下和linux运行,需要对应版本的python (3.0)。完全免费。 主要功能包括:多聚体建模,二硫键建模,杂原子建模等(配体、辅酶等)。自带一

8、套模建结构后的优化、分析。 But! 该软件完全是命令行模式,操作相对复杂,可控制的地方多。,Easymodeller,对于习惯于GUI的我们来说,modeller操作不太方便。 于是。 印度 Hyderabad大学的一位牛人Kuntal Kumar Bhusan为其编写了一个GUI界面,即为Easy Modeller。EasyModeller,目前最新版本为4.0。 之后,又有SWIFT MODELLER,UCSF Chimera interface *注: 图形用户界面(Graphical User Interface,GUI),1、指定工作目录,2、输入氨基酸序列,3、加载模板信息(可指

9、定加载某条链,可加载多模板),4、多重序列比对(可编辑比对结果),5、生成模型(自动Loop建模,手工Loop建模),6、优化模型,Easymodeller 2.0,氨基酸序列,提交模板序列,工作目录,多重序列比对,模型优化,命令信息显示窗口,模型生成,同源模建结果评价与改进策略,同源模建结果的评价 PROCHECK 、 WHATCHECK 、ERRAT 、 Verify_3D 、PROVE UCLA-DOE的SAVES服务器包括了这五种常用的检测 其网址为:http:/services.mbi.ucla.edu/SAVES/ 除SAVES外,Molprobity也是一个常用的在线模型分析工具

10、,其网址为:http:/molprobity.biochem.duke.edu/index.php,PROCHECK: 以PDB中高分辨的晶体结构参数为参考,给出提交模型的一系列立体化学参数(主链)。其输出的结果包括:拉氏图,主链的键长与键角,二级结构图,平面侧链与水平面之间的背离程度等。 WHATCHECK:包含大量的检测项,可以针对提交的蛋白结构与正常结构之间的差异,产生一个非常长而且详细的报告。 ERRAT: 计算0.35 nm范围之内,不同原子类型对之间形成的非键相互作用的数目(侧链)。原子按照C、N、O/S进行分类,所以有六种不同的相互作用类型:CC、CN、CO、 NN、 NO、 O

11、O。得分85比较好。,Verify_3D:比较模型和氨基酸一级结构的关系,获得PASS评价即可。 PROVE: 与预先计算好的一系列标准体积之间的差别。用Z-score 来表示。Z-score作为一个统计学值,可以显示模板蛋白质和待测蛋白之间的匹配程度,当Z-score较低时,就意味着没有匹配搜索的结构,实例,以我研究的APS kinase的模型进行实例讲解:,BLAST-P,PDB数据库,寻找最合适模板 3UIE和4FXP(53%),EsayModeller 多模板建模,SAVES检测模型质量,Chiron 模型优化,SAVES再次检验模型,模型名称,贴入序列,加载模板(PDB文件),模板对

12、齐,多重序列比对,生成模型,模型优化,自动Loop建模,手动Loop建模,模型名称,Manual Loop modeling,Loop优化的起始碱基,加载一个需要优化的PDB模型,Loop优化的结束碱基,手动Loop建模后模型的文件,Advanced Optimization Options,加载优化的模型,自动优化模型,生成分子动力学轨迹(用VMD或CHIMERA打开查看),绘制模型的能量图,DOPE(Discrete Optimized Protein Energy) Energy,模型质量检验,模型提交SAVES服务器(Structural Analysis and Verificati

13、on Server)进行检验,PROCHECK,PROCHECK:本部分主要需要的是拉氏图(Ramachandran Plot),可下载ps格式、PDF格式以及JPG格式。落在核心区+允许区+最大允许区的碱基百分比大于95%的模型质量很好。,Verify_3D,78.74% of the residues had an averaged 3D-1D score 0.2,ERRAT,Overall quality factor值越高越好,一般高解析度的晶体结构该值可以达到95,而对于解析度一般的来说该值只能到91左右。本例中的ERRAT值为68.280, 还需要继续优化改进。,Chiron进行优化,我们考虑采用计算量较少的Chiron服务器对模建结构的clash进行处理。 Chiron服务器http:/troll.med.unc.edu/chiron/processManager.php,修正前,修正后,模型质量再检测,用SAVES服务器对于经过处理的蛋白结构进行评价,优化前,优化后,77.419,68.280,优化前,优化后,后续优化,结构方面:利用MD对整个结构进行进一步的松弛,以去除不合适的clash。 能量方面:利用Gromacs对蛋白结构进行能量最小化。,谢谢!,

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