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1、双苯氟嗪对血管紧张素!诱导新生大鼠心肌成纤维细 胞增殖和胶原合成的影响及其机制研究 张! 伟“， 杨! 涛#， 苏彦欣“， 苗庆峰“， 张永健“， 王永利“ （河北医科大学 “$ 药理学教研室、 #$ 组胚学教研室，河北 石家庄! % ?48-$ =-3$ =9； 张永健 （“0A ;A 37 洗涤; 次， 弃上清， 加入羊抗鼠 MV*6/VQY 二抗工作液 ;AA A 37， 离心， 弃上清 以除去未结合的荧光二抗， 上机检测前加入 S! AB ; 37， 经 DAA 目钢网过滤后上流式细胞仪检测。 在对蛋白免疫荧光标记物测定时， 设一抗或二抗的 本底对照或阴性对照。用 “Z+%S/)!6
2、法检测心肌成纤 维细胞经典型蛋白激酶6“亚型 （-S6“） 、 细胞外 *+, !# -./01234.516/75 S,31.15.1)58, .15.1$15Q8P /4-8,5*Y)6YYYY*6)666)6)6*Y*Y666)*6* 6*)Y)Y6)*Y6YY*YY)6Y)*YY)YYYO$ 的 3+4 （$ “、 $($） 作用 ?A BC D 后， 平均吸光度分别为 27! （“ G #， $ KC） LM(N488?($ ($ ($ ($ ($的 3+4 E 个剂量组 （$、 $($） 均能够增高 ?A 的 L 蛋白含量的影响0567! 能够明显增加 2?X5 蛋白含量， 较空白
3、对照组相比， 差异有显著性 （! 9($ 的 3+4 E 个剂量组 （$、 $($） 均能明显 降低 2?X5 蛋白含量， 与 567!组相比差异有显著 性 （! 9($ 的 3+4 （$、 $($） 均能明显抑制由 567 !诱导大鼠 ?A 的 ?($ F-/C GB/$#$/($ F-/- G%/F#$($ F-/% GE/B#H/$ G$/F#$B/ F G%/ E#%E/ C GE/ B#B:E G%:# 0 0 R! 9 .) ? ： $IMYOM；5： ,(6)M($； ?：567! Z 3+4$($； 3：567! Z 3+4$($； !： 567! Z 3+4$ “;($ ?0
4、7 “$ (5*+,4.13.4*,.74 .) ? ： $IMYOM；5： ,(6)M($； ?： 567! Z 3+4 $($； 3：567! Z 3+4 $($； !：567 ! Z 3+4 $ “;($ H ! ! “： #$ % “， # ,0?$E$G$EF# ;$E$G$EHG ;$E$F 3)15!#$ 1*036 7# $EH# ;$E$FII$EFJ ;$E$GII$E=G ;$E$GII 9$E$G#$EF$ ;$E$K#$EFH ;$E$G# 9$E$K#$EFG ;$E$G#$EFJ ;$E$K# 9$E$G#$EFH ;$E$#$EHM ;$E$G# ! ! I$
5、N$O $# %“ B012,03；#$ N$O $ H，#$ N$O $#%“ )15!5,0? “， # ,0?GEFM#F#EHG ;KEHK )15!#$ 1*036 7# #G#EG$ ;FEG=II#G#E=J ;GEHGII 9GEJ$#F#EFG ;FEK# 9FE#$#GJEG$ ;FEK# 9GEHJ#GLE=K ;HE$# II$ N$O $# %“ B012,03；#$ N$O $H，#$ N$O $# %“ )15!5,0? （ SK$） )：/012,03； 4：)15!#$ 1*036 7#5,0?（ S K$） )：)15!#$ 1*036 7#5,0?;， ,
6、7? 1/期百 分率， 降低 期和 1A? + 期百分率及增殖指数， 阻滞 7( 细胞周期。降低 ,7 ?,-8:72/?/ U6 *? (,*37 （! ! “# “A，! ! “# “$， ,*.(*+/2*1B） % % L (,3? 14*,-/37 -7) +311-6*7 .B7/0*. ./8H1-/*) KB ;76(， I0+0 ,*1-/*) /3 )3I7,*6H1-/37 /0* 1*2*1. 34 ?$ 89:; ，/0* E9D$ -7) +CD5 文章编号： $“$ G$ROQ （N“T） “N G“N$N G“S 摘要： 目的J 探讨腺苷 ;$受体阻断对大鼠海马
7、 L$受体特异性阻断剂 Q?环戊?$， P?二丙基黄嘌呤 （$受体； 学习； 记 忆； 脑源性神经营养因子； 内质网 J J 研究表明， 海马脑源性神经营养因子 （K,-7?)*? ,2*) 7*H,3/,3(0+ 4-+/3,， L$受体在学习记忆和海马突触传递活 动中的作用机制作进一步形态学方面的解释。 05 材料和方法 0% 05 材料 0% 0% 05 动物5 ./-, 大鼠， !， 体重 N“ WNN“ 6， 由 中国医学科学院药物研究所提供。 0% 0% 65药物5 Q?环戊?$， P?二丙基黄嘌呤 （Q?+B+13? (*7/B1?$， P?)(,3(B1-7/07*， L） ，
8、 北京化工 厂；E(37Q$N （2.+3./B） ， 日本； 防脱片剂 ;CE， 北京 中山生物技术公司； 实验用水为三重蒸水。 0% 0% 75仪器5_E$“5U(型电子显微镜， 日本电 子公 司； :3- ) 超 薄 切 片 机， 瑞 典 FDL 公 司； Eabc:= $Q“型恒冷箱切片机， 德国； LUS“ 型 c? 1B8(H. 显微镜， 日本； 5a; 多功能真彩色病理图 像分析系统， 北京航空航天大学。 0% 65 方法 0% 6% 05 实验设计和分组5取 ./-, 大鼠 $Q 只， 随 机分为 P 组， 即生理盐水 （73,8-1 .-17*， :） 组、 &C5CU （“# A 86V6 G$） 组、 &C5CU （“# $ 86V6G$） 组， 每组 T 只动物； ( 给药， 每日 $ 次， 共 $A )。 0% 6% 65 免疫组化样品制备及观察5 末次给药后$ 0 N$N中国药理学通报J “#$%& !#()*(+,-,.$+(- /0-&1$%J N“T *K； 66 （N） ： N$N WA