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1、运城学院学士学位论文苦参碱的提取与含量测定摘 要：本论文通过单因子试验，研究了乙醇浓度、浸泡时间、浸泡温度、提取次数和液料比对苦参中苦参碱提取率的影响；采用紫外可见分光光度法测定该成分含量，作为评价指标。目的是为了优选苦参中苦参碱的提取条件，测定苦参中苦参碱的含量。最佳条件是：乙醇浓度为60%、浸泡时间为2.5小时、浸泡温度为60、提取次数为2次、液料比为12：1，在此最佳工艺条件下苦参碱含量与提取率均较高，苦参中苦参碱的得率为8.89%。优选得到的提取工艺条件，简便易行且稳定性好。 关键词：苦参； 苦参碱； 提取条件； 含量测定Matrine Extraction and Determina
2、tionAbstract: In this paper, single-factor experiment was conducted to study the ethanol concentration, soaking time, soaking temperature, frequency and fluid extraction than expected rate of extraction of matrine in matrine impact; using UV-visible spectrophotometric determination of the ingredient
3、s, as the evaluation indicators. The purpose of optimization of the extraction of matrine in matrine conditions, the determination of matrine in matrine content. The best conditions are: 60% ethanol concentration, soaking time of 2.5 hours, soaking temperature of 60 , for 2 times the number of extra
4、ction and liquid feed ratio of 12:1, the optimum conditions in the concentration and extraction of matrine rates are higher in Matrine Kushen a rate of 8.89 percent. The optimized extraction conditions, simple and good stability.Key Words: Kushen; Matrine; extraction conditions; Determination 目 录 1
5、前言11.1 苦参碱的特点11.2 研究苦参碱的目的和意义21.3 国内外研究的状况31.3.1 国外研究概况31.3.2 国内研究概况31.4 本文的研究内容51.5 本文的研究目的及意义52 实验部分52.1 实验仪器及药品试剂52.1.1 主要仪器52.1.2 药品试剂52.2 实验方法62.2.1最大吸收波长的选择62.2.2标准曲线绘制62.2.3样品的测定73 结果与分析73.1 苦参碱的最大吸收波长选择与标准曲线绘制73.2 单因素试验93.2.1乙醇浓度对苦参中苦参碱得率的影响93.2.2提取次数对苦参中苦参碱得率的影响103.2.3浸泡时间对苦参中苦参碱得率的影响113.2.
6、4浸泡温度对苦参中苦参碱得率的影响113.2.5液料比对苦参中苦参碱得率的影响123.3 验证试验133.4 苦参中苦参碱理化性质的分析结果144 结论14参考文献15致 谢16171 前言生物碱是指从植物中分离出的一类含氮杂环的有机物，具有碱性和显著的生理活性。目前从植物中分离出的生物碱有5000-6000种，一些生物碱因其具有防治病虫害等作用，被开发为植物源农药产品，并成为近年来研究的热点。 适宜的提取方法对制备生物碱农药保持有效成分的活性具有重要意义。随着科技的发展，生物碱提取和纯化方面出现了许多新技术，如微波萃取技术、超临界流体萃取技术、超声萃取技术、膜分离技术、高速逆流色谱等，这些方
7、法使生物碱中有效成分提取率和纯度与常规提取方法相比，均有所提高。 苦参，别名野槐根、山槐根、干人参、苦骨。双子叶植物纲，豆科。落叶亚港灌木。根黄色、奇数羽状复叶，夏季开花，碟形花冠，淡黄色。中医学上以根入药。根呈圆柱形，微扭曲，外表棕黄色，粗糙，有明显的纵皱纹，皮孔突出，皮薄易脱落，多破碎向外反卷，断面黄色，显纤维，有粉质，中心部微菊花心，味极苦。主产于西昌、德昌、甘洛等县市，年产量10万多公斤，功能清热燥湿，杀虫利尿，主治各种传染性皮肤病和痢疾，痔血、湿热黄痘、是配制各种治疗皮肤药品的主要原料，可根据其药用价值、进一步开发加工增值。1.1 苦参碱的特点苦参碱Matrine(Sophocarp
8、idine)：本品系从豆科属植物苦参(Sophora flavescens Ait.)或平科植物广豆根(Sophora subprostrata Chun et T.Chen)中分离出来的生物碱。 性状：苦参碱是白金雀儿碱(lupanine)的异构体，为白色粉末，有四种形态。 a苦参碱，为针状或柱状结晶，熔点为76度； 苦参碱，为斜方晶状体，熔点为87度； r苦参碱，为液体，沸点为223度； &苦参碱是柱状结晶，熔点为84度。常见的是a苦参碱，苦参碱能溶于水、笨、氯仿、甲醇、乙醇，微溶于石油醚。苦参碱在1958年首次被分离和确认，是一类独特的生物碱(喹里西啶生物碱，也称羽扇生物碱tetracy
9、clo-quinolizindine alkaloids)，存在于Sophora类植物中，主要用来治疗癌症，病毒性肝炎，心脏病(例如病毒性心肌炎)，以及皮肤病牛皮癣和湿疹(psoriasis and eczema)。 1.2 研究苦参碱的目的和意义在我国，乙型肝炎患者和乙型肝炎病毒携带者有1亿多人，每年治疗经费高达百亿元，严重影响国家的经济发展和人民的身体健康。目前，治疗慢性乙型肝炎的药物颇多，但临床效果高、低不一，临床比较认同的是IFN-，但因其价格较贵及副作用使其临床应用受限，而苦参素有IFN-相似的治疗作用，且不良反应少，价格低廉等优点，将是一种极有前途的乙型肝炎治疗药物。目前公认的具有
10、抗病毒作用的中药主要是苦参素。苦参素是从苦豆子或苦参中提取的生物碱，其主要成分是氧化苦参碱。祖国传统医学认为其具有清热利湿，退黄利尿之功。现代药理研究发现苦参素具有以下作用：a.抑制乙肝病毒的作用。b.降酶保肝作用。c.抗肝硬化作用。d.免疫调节作用。近10年来，国内、外对氧化苦参碱及苦参碱的研究较多20，但仅限于实验研究。1994年，上海市传染病医院研究者发现氧化苦参碱抗麻鸭乙型肝炎病毒作用，经上海市多家医院协作采用氧化苦参碱治疗慢性乙型肝炎结果均取得良好疗效；1996年12月，由卫生部指定的上海医科大学附属华山医院、北京佑安医院完成了40例随机双盲验证及其它有关药效、不良反应的基础论证工作
11、；1998年2月24日，卫生部批准氧化苦参碱为治疗慢性乙型肝炎的五类新药。苦参素注射液，苦参素胶囊和苦参素片是我国自主开发完成、享有完全知识产权的纯天然生物碱类药品，由于疗效可靠，临床使用量迅速增长，故进一步加强对苦参碱的研究具有重要的社会意义和巨大的经济效益。1.3 国内外研究的状况近几年来对苦参碱的研究已得到了突飞猛进的发展，尤其是苦参碱的制备技术和药理性质的研究。 1.3.1 国外研究概况 从苦豆子中提取分离纯化苦参碱，在本世纪30年代起国外学者Oreknov等就已经做了研究。他们采用分级碱化、石油醚中反复溶解、转变为碘氢酸盐的方法来分离提取苦参碱。而在 1964 年，外学者Asluno
12、v等首次采用了氧化铝柱层析法来提取分离苦参碱1。在 1973 年，Mohaxoba 等将苦豆子提取的总生物碱按照极性的大小分成强碱和弱碱，然后用不同极性的溶剂进行萃取，再结合柱层析法进行提取和分离2。在1974年，Mohaxoba 又从可溶于石油醚的非极性生物碱中，利用生物碱碱性强弱的不同，用同一溶剂分段萃取，再结合氧化铝柱层析提取分离苦参碱，在1977年 Kyhkapob用甲醇提取总生物碱经苯提取后柱层析，提取和分离苦参碱3。1.3.2 国内研究概况国内对苦参碱的研究起步较晚19。在1983年宁夏人名出版社出版的仲仁山著的苦豆子的研究及其应用一书中记载了1971年宁夏盐池制药厂赵博光等利用生
13、物碱的极性不同，用不同极性溶剂进行萃取，分为若干部分，再利用氧化铝柱层析和反流分布法进行分离，从而得到苦参碱的工艺。1980年中草药杂志第8期350页公开了同样是赵博光等对苦豆草成熟的种子及花期叶中的苦参碱提取分离的生产工艺进行了初步的研究。认为用甲苯提取分离苦参碱，所得产品纯度高，且具有价廉、易回收的优点4。中国专利公开了从苦豆子制备苦参碱的工艺，它是将苦豆子经浸出、提取、转型、沉 淀、催化加氢和水相有机萃取，重结晶等工艺步骤，制得苦参碱。高红宁5等利用陶瓷膜微滤技术来澄清苦参水提液，李宗效6等利用工业甲醇回流提取苦参粉多次后合并提取液过滤，滤液减压蒸馏回收溶剂，然后用亲脂性溶剂脱脂萃取的方
14、法来提取和分离苦参碱。张存莉7等用不同浓度的乙醇和阳离子交换树脂对苦参中苦参碱进行了提取和纯化，并对不同的苦参中的苦参碱的纯化工艺进行了比较和研究。张奎远8 等利用正交设计对乙醇的浓度、用量、提取时间、提取次数等进行了正交实验确定了苦参中苦参碱的最佳提取工艺。于喜水9等做了乙醇法、氨-氯仿法、阳离子交换树脂法三种方法的对比实验，证明了树脂法提取苦参碱收率高、质量好。杨基森10等用正交试验对苦参提取、精制工艺条件进行了考察，以苦参碱为定量指针，用薄层扫描法测定不同工艺条件苦参碱含量变化的动向参数，结果表明水提醇沉法损失较大，醇提水沉法损失次之。蔡中琴11等也用正交试验对苦参碱的提取工艺进行了优选
15、。试验选择提取溶剂、提取方式、浓缩温度三个因子，每因子三水平，用正交表进行试验设计。结果表明用水作提取剂，采用渗漉法，渗漉液80下浓缩为提取苦参碱的条件。秦学功12等也考察了苦豆子中苦参碱的提取工艺。在室温下用稀盐酸水提取苦豆子中苦参总碱，考查pH值、浸提时间、苦豆子粉粒度及保持副压、超声波振荡下总碱浸出率，并对比热浸状况，结果表明稀酸水冷浸条件下苦参总碱浸出率比热浸要高，并且也可加快浸提速度。秦学功12等也作了用大孔吸附树脂吸附分离苦参碱的研究，以总生物碱吸附量和解吸率为指标，从大范围筛选树脂，并研究吸附与解吸的优化条件。随着苦参碱研究的深入，其分析检测方法也得到了很大程度的改进，目前用来分
16、析检测苦参碱的方法主要有以下几种，即酸碱滴定法、安培滴定法、改良REIFER、试剂显色法、毛细管气相色谱法、双波长薄层扫描法、纸色谱法、柱色谱法、分光光度法薄、层色谱法、高效液相色谱法13，其中前几种方法操作过程复杂、灵敏度低，在苦参碱的分析测定中不常用。分光光度法也可用于苦参中苦参碱的测定中，但此法也有一定缺陷，在测定中可能会受到其它杂质和色素的干扰而影响了测定结果。因此，此法一般是和薄层色谱法同时运用的。而薄层色谱法自从1958年建立后，应用范围极其广泛。经过各种改进后，基本上代替了纸色谱法。它操作迅速，能以较高的分离性能处理微量物质，此法除特别的挥发性物质外，基本上可用于所有的各种化合物
17、，尤其成为植物成分分析和研究方面不可缺少的实验手段，也是目前对生物碱定性分离的主要方法。具有代表性的有康红英14等采用薄层色谱法鉴别和分离了色嗄诺中的苦参碱，证明了此法简便、省时、分离效果好、斑点清晰、结果易判断。陆华15等采用薄层扫描法测定了苦参散中苦参碱的含量。高效液相色谱法则在苦参碱含量测定中应用的比较普遍，它可以将苦参碱与其它副产品完全分离，从而快速、准确的测定苦参碱的含量。具有代表性的有熊英等采用RP-HPLC法测定了龙凤洁身纯中苦参碱和蛇床子素的含量，证明此法灵敏、准确。1.4 本文的研究内容本论文通过单因子试验，对苦参中苦参碱的提取工艺条件进行了研究，研究了乙醇浓度、浸泡时间、浸
18、泡温度、提取次数和液料比对苦参中苦参碱提取的影响；采用紫外可见分光光度法测定该成分含量，作为评价指标。以期为苦参的精深加工与利用和苦参中苦参碱的生物学活性研究与应用提供依据。1.5 本文的研究目的及意义通过对苦参中苦参碱的提取工艺的研究，选择提取苦参中苦参碱的最佳提取条件。苦参素在治疗慢性乙型肝炎中有同IFN-相似的治疗作用，且不良反应少，价格低廉。研究苦参中苦参碱的提取，可以为苦参素的制造和治疗慢性乙型肝炎提供依据。2 实验部分2.1 实验仪器及药品试剂2.1.1 主要仪器UV-7504紫外-可见分光光度计：上海欣茂仪器有限公司；DF-101S磁力搅拌器：金坛市岸头国瑞实验仪器厂；HHS数字
19、恒温水浴锅：天津华北实验仪器有限公司；FA1004电子天平：上海恒平科学仪器有限公司；NOKIA1200计时器：北京诺基亚制造厂。2.1.2 药品试剂（1）苦参碱标准品：购自郑州永和制药有限公司（2）苦参：购自运城市药材市场 （3）溴麝草酚兰pH=7.6缓冲液：精确称取溴麝草酚兰0.125g，加入到依式子“65.0X+435.0Y+水=1000mL，X: 0.2mol/L的磷酸二氢钠，Y: 0.2mol/L的磷酸氢二钠”配制的溶液中，振摇。 （4）碘化汞钾溶液：二氧化汞1.36g，加水60mL使之溶解。另取碘化钾5g，加水10mL使之溶解。将两种液体混合，加水稀释至1000mL。 （7）0.2
20、mol/L的磷酸二氢钠：精确称取磷酸二氢钠3.1202g，加水稀释，定容于100mL的容量瓶中。 （8）0.2mol/L的磷酸氢二钠：精确称取磷酸氢二钠14.196g，加水稀释，定容于100mL的容量瓶中。 （9）二氧化汞，碘化钾，无水乙醇，氯仿以上所用试剂均为分析纯。2.2 实验方法2.2.1最大吸收波长的选择精确称取苦参碱标准品250mg，置于25mL容量瓶中，用无水已醇定容，摇匀。精密吸取标准品溶液4.0mL，置于10mL容量瓶中，用无水已醇稀释至刻度线，摇匀。再吸取稀释液2mL于三角烧瓶中，加5mL pH=7.6的溴麝草酚兰缓冲溶液和10mL氯仿，密塞，振摇2min，移入50mL分液漏
21、斗中，静置30min，分出氯仿层于具塞比塞管中。空白试剂以2mL无水乙醇代替标准品稀释液，其他步骤同上。2.2.2 标准曲线绘制精确称取苦参碱标准品250mg，置于25mL容量瓶中，用无水已醇定容，摇匀。分别精密吸取标准品溶液1.0、2.0、3.0 、4.0、 5.0mL, 置于10mL容量瓶中, 用无水已醇稀释至刻度线，摇匀。再分别吸取稀释液2mL于5个三角烧瓶中，各加5mL的pH=7.6的溴麝草酚兰缓冲溶液和10mL氯仿，密塞，振摇2min，移入50mL分液漏斗中，静置30min，分出氯仿层于具塞比塞管中。空白试剂以2mL无水乙醇代替标准品稀释液，其他步骤同上。2.2.3样品的测定精确取样
22、品提取液2mL，加5mL pH=7.6的溴麝草酚兰缓冲溶液和10mL氯仿，密塞，振摇2min，移入50mL分液漏斗中，静置30min，分出氯仿层于具塞比塞管中。在波长410nm处测定苦参碱的A值。重复3次，取其平均值。根据标准曲线方程求出提取物中苦参碱的含量，按下面方法计算苦参碱得率。苦参碱得率= 苦参碱质量/苦参质量100%3 结果与分析3.1 苦参碱的最大吸收波长选择与标准曲线绘制将2.2.1所制得的药剂置入紫外-可见分光光度计中，测定其不同波长的吸光度。重复3次，求其平均值。表1. 苦参碱的最大吸收波长选择 波长（nm） 吸 光 度(A) 平均值(A)3800.5400.3350.277
23、0.3843900.5790.3600.2760.4053950.5940.3740.2640.4114000.5900.4040.2610.4184100.5970.4250.2680.4304150.5800.4060.2640.417图1. 苦参碱的最大吸收波长选择将2.2.2所制得的药剂置入紫外-可见分光光度计中，测定其在特定波长的吸光度。重复3次，求其平均值。表2. 苦参碱的标准曲线绘制浓度（L/mL）吸 光 度(A)平均值(A)10.1240.1330.1320.13020.2790.2720.2590.27030.4010.3620.3530.37240.5110.4930.48
24、10.49550.7060.6270.6070.647图2. 苦参碱的标准曲线绘制由图1可知，苦参碱与溴麝草酚兰反应物在波长410nm处有最大吸收，与文献报道基本一致，故选择410nm为测定波长。继续在410nm处测定各个浓度的吸光度，以浓度（L/mL）为横坐标，吸光度（A）为纵坐标，得回归方程为：Y=0.1259X+0.0051，R2=0.9960（见图2）。3.2 单因素试验3.2.1 乙醇浓度对苦参中苦参碱得率的影响分别准确称取5.0g苦参于5个烧杯中，再分别向其中加100%、80%、60%、40%、20%的乙醇20mL，浸置3小时，过滤，测定其滤液吸光度（方法同2.2.3）。表3. 乙
25、醇浓度对苦参碱得率影响表瓶号吸 光 度(A)平均值(A)得率（%） 10.7900.8180.8270.8112.56321.3421.3391.3371.3394.23931.6921.5681.5571.6065.08541.3361.3341.3171.3294.20651.4771.4751.4741.4754.671图3. 乙醇浓度对苦参碱得率影响图由图 3不同乙醇浓度对苦参碱得率的影响可知，在乙醇浓度40%-60%范围内，随着浓度的增加，苦参碱得率逐渐升高，当浓度超过60%，得率开始下降。这是由于此浓度的乙醇溶液和苦参碱的极性相差开始加大，进而导致苦参碱得率下降。 因此，提取所用乙
26、醇浓度为60%。3.2.2提取次数对苦参中苦参碱得率的影响分别准确称取5.0g苦参于5个烧杯中，各向其中加入60%的乙醇33.3mL，再分别浸泡1、2、3、4、5次，每次一小时，过滤，测定滤液吸光度（方法同2.2.3）。表4. 提取次数对苦参中苦参碱得率的影响表提取次数吸 光 度(A)平均值(A)得率（%）11.0630.9940.9931.0175.315 20.8340.7950.7820.8048.44830.4900.4690.4640.4747.44740.2850.2720.2600.2725.65550.2010.1950.1980.1985.102图4. 提取次数对苦参中苦参碱
27、得率的影响图由图4提取次数对苦参碱得率的影响结果可知，并不是提取次数越多，苦参碱得率就越高。提取2次，苦参碱得率最高。提取次数再增加，得率不但不升，反而开始下降。这是由于溶剂增加以及其他杂质的溶出，导致苦参碱浓度下降，进而使得率略微下降。故提取的最佳次数为2次。3.2.3浸泡时间对苦参中苦参碱得率的影响分别准确称取5.0g苦参于6个烧杯中，各向其中加入60%的乙醇33.3mL ，再分别浸泡1.0、1.5、2.0、2.5、3.5、5小时，过滤，测定滤液吸光度（方法同2.2.3）。表5. 浸泡时间对苦参中苦参碱得率的影响表浸泡时间吸 光 度(A)平均值(A)得率（%）1.0小时1.0630.994
28、0.9931.0175.3511.5小时1.0461.0321.0171.0325.4302.0小时1.1811.1501.1441.1586.1012.5小时1.5611.4891.4811.5107.9633.5小时0.9451.0691.0811.0325.4305.0小时0.9280.9180.9030.9164.820 图5. 浸泡时间对苦参中苦参碱得率的影响图由图5浸置时间对苦参中苦参碱得率的影响可知，浸置2.5小时之内，得率增加，时间延长，得率开始下降。这可能是由于2.5小时时，被提取的苦参碱浓度最大，时间再延长，其浓度虽可继续增加，但过高的浓度导致苦参碱被分解、破坏，进而苦参碱
29、得率下降。所以，综合作用结果，浸置2.5小时,得率最高。3.2.4浸泡温度对苦参中苦参碱得率的影响分别准确称取2.0g苦参于4个三角烧瓶中，各向其中加入50%的乙醇10.0mL，分别置于30、40、50、60的水域中，浸置3.5小时，过滤，测定滤液吸光度（方法同2.2.3）。表6. 浸泡温度对苦参中苦参碱得率的影响表浸泡温度吸 光 度(A)平均值(A)得率（%）300.8360.8300.8320.8333.287401.1901.1561.1421.1634.597501.3791.2211.1911.2644.998601.4681.4721.4001.4475.725图6. 浸泡温度对苦
30、参中苦参碱得率的影响图为了更好确定温度与得率的关系，选用不同的温度进行提取。由图6浸泡温度对苦参中苦参碱得率的影响可知，随着浸泡温度的升高，得率增加。3.2.5液料比对苦参中苦参碱得率的影响分别准确称取2.0g18苦参于5个三角烧瓶中，各向其中加入50%的乙醇8.0mL、10.0mL、16.0mL、20.0mL、24.0mL，常温下浸置1.0小时，过滤，测定滤液吸光度（方法同2.2.3）。表7. 液料比对苦参中苦参碱得率的影响表液料比吸 光 度(A)平均值(A)得率（%）40.4170.5560.5810.5181.63050.4760.4960.5050.4921.93580.5560.53
31、00.5030.5303.333100.5520.5130.4640.5104.007120.4830.4360.3850.4354.078图7. 液料比对苦参中苦参碱得率的影响图不同的液料比对苦参中苦参碱得率的影响结果见7图。从图6可以看出，在所选液料比试验范围内苦参碱的得率随液料比增加而升高，当液料比为12：1时，苦参碱得率最高。因此，液料比选12：1为最佳。3.3 验证试验在上面确定的最佳提取工艺下进行验证试验。准确称取2.0g苦参于三角烧瓶中，加入24mL60%的乙醇，置于60的水域中，浸置2.5小时，过滤，提取2次，测定滤液吸光度（方法同2.2.3）。表8. 上面确定的最佳提取工艺下
32、进行验证试验吸 光 度(A)平均值(A)得率（%）0.465 0.448 0.501 0.4718.89由表8.上面确定的最佳提取工艺下进行验证试验可知，在此工艺下测定的苦参碱得率最高，稳定且可靠16。3.4 苦参中苦参碱理化性质的分析结果取苦参中苦参碱滤液1mL，加碘化汞钾试液，立即产生明显淡黄色沉淀，表明提取物为苦参碱。滤液冻干后为浅棕黄色粉末，略有豆腥味、微溶于高浓度的乙醇、氯仿、甲醇、丙酮等有机溶剂21。4 结论本论文以不同浓度的乙醇为提取剂，通过单因子试验，研究了乙醇浓度、浸泡时间、浸泡温度、提取次数和液料比对苦参中苦参碱提取的影响；采用紫外可见分光光度法测定该成分含量，作为评价指标
33、17。得到了如下结论：乙醇浓度为60%、浸泡时间为2.5小时、浸泡温度为60、提取次数为2次、液料比为12：1，在此最佳工艺条件下苦参碱含量与提取率均较高，得率为8.89%。参考文献1 A. Ueno et al. Studies on Lupin Alkaloids VI. Isolation and structure of (+)-IsomatrineJ. Chem. Parma. Bull.1975, 23(11): 2560.2 詹原尧.苦参生物碱-苦参碱和氧化苦参碱的提取、分离J.天津药学，1991,12 (3): 7-10.3 赵玉英，庞青云，刘京渤，等.苦参生物碱的研究J.天然
34、产物研究与开发，1994，6（1）:10-13.4 王秀坤，李家实，魏璐雪.苦参挥发油成分的研究J.中国中药杂志，1994,19 (9): 552-553.5 袁黎明，傅苦农，张天佑.高速逆流色谱在植物有效成分分离中的应用J.药物分析杂志，1998, 18(1): 60-64.6胡爱军，丘秦球.物理场强化萃取新技术及应用J.安徽化工，2002,126-29.7赵玉英，郭敏杰，王那，等.苦参中生物碱含量测定J.北京医科大学学报，1992, 24(5): 419-420.8姚三桃，张启伟.气相色谱法测定抗类风湿胶囊中苦参碱含量J.中成药，1994, 16 (8 ): 17-18.9赵晓莉.碱化条件
35、对基地收率的影响J.黑龙江商学院学报 (自然科学报)，2000, 16(1):9-11.10王宇.苦参化学、工艺、制剂及质量研究近况J.中成药，1997, 19 (4):39-41.11李尧.中药，新世纪的形象L程J.生物医药世界，2001, (2): 6-712林家齐，孙晶华，傅荔韬.磁场对水结构的影响J.哈尔滨电工学院学报，1996, 19 (4): 470-472.13刘志，毕鸿亮.应用紫外分光光度法测定苦参总碱的含量田.黑龙江医药，2001，14 (3):174-175.14黎海彬，李琳，郭祀远，等.药用植物有效成分提取技术J.现代化工，2000, 22 (5 ): 59-62.15房
36、微，房继忠.苦参素提取分离工艺方法研究J.兰州医学院学报，1991，17(1):17-2016蔡中琴.用正交试验法优选苦参中苦参碱的最佳提取工艺.中药材，1998，21 （4）：204-20517常琪等.中国中药杂志，1998，2（9）：554-55518杜保民等.苦豆根生物碱的研究.西北药学杂志，1989，4（2）15-1619黄秀梅等.苦豆子类生物碱的药理学研究进展.中国药事，2002 ，16 （3）：175-17720李典鹏等.广西植物，2000，20（3）：270-27621刘程等.食品添加剂实用大全.北京：北京工业大学出版社，1994致 谢本论文是在老师杨美玲和崔东亚的悉心指导下才得以顺利完成的。老师严谨的治学态度，忘我的工作精神始终是我学习的榜样和前进的动力。恩师的言传身教，学生将受益终生，再次深表衷心的感谢和崇高的敬意!同时，我也要感谢运城学院应用化学系的各位老师和领导对我学习、生活的关心与帮助。四年来，他们一直关心我的成长，再次表示深深谢意。四年来，我也得到0501班各位同学的帮助和支持。共同的学习和生活，使我们建立了深厚的友情，再次一并感谢!再次，我要深深感激我的家人。在我多年求学生涯中，给予我巨大的物质资助和精神支持，他们的恩情我将铭记在心!最后再次向所有关心、帮助和支持我的老师、同学、家人和朋友们表示深深的感激和谢意!