一例RHD弱表达突变体的血清学和分子生物学研究.pdf

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1、书书书 短篇论著 基金项目: 浙江省自然科学基金资助项目 (M303194) 作者单位: 310006 杭州, 浙江省血液中心输血研究所 卫生部血 液安全研究重点实验室 通讯作者: 严力行, Email:ylx zjb. org. cn 一例 RhD 弱表达突变体的血清学和分子生物学研究 吴俊杰 许先国 洪小珍 姜侃 傅启华 严力行 位于人类 1 号染色体上 (1p34-36) 的 RHD 和 RHCE 基因分别编码 Rh 血型系统的核心蛋白 RhD 和 RhCE 1。其中 D 抗原因为具有强烈的免疫原性 而具有重要的临床意义。目前, 对弱 D 表型的分子 机理及频率分布等研究大部分集中在欧洲

2、人群中, 中国人群中这方面的研究还很少 2-7。我们对 1 例 D 突变体进行了研究, 发现了一种新的 RHD 等位基 因, 现报道如下。 一、 对象与方法 1. 对象: 先证者系本中心无偿献血员, 男, 20 岁, 汉族; 先证者及家系成员均为浙江人, 身体健 康, 均非近亲结婚; 随机选取 354 名 Rh 阳性和 188 名Rh 阴性浙江籍无偿献血员作为等位基因频 率的调查对象, 年龄 18 50 岁。 2. Rh 表型血清学鉴定: 采用常规盐水平板法或 试管法。RhD 鉴定使用加拿大 Dominion 公司的混 合单克隆抗 D 试剂, 根据试剂说明, RhD 阴性表型 用间接抗人球蛋白

3、试验 (IAT) 进一步确认。抗人球 蛋白试剂为美国 Immuco 公司的兔源抗 IgG。RhC、 Rhc、 RhE 和 Rhe 鉴定试剂为加拿大 Titus 公司的单 克隆抗体。 3. 基因组 DNA 制备: 采用 PUREGENE!DNA 纯化试剂盒(Gentra 公司产品, 美国 Minneapolis) , 从枸橼酸钠抗凝的外周血中制备基因组 DNA。 4. RHD 基因序列分析: 参照 Wagner 等 7和 Legler 等 8的方法, 并略作修改。 5. 等位基因特异-聚 合 酶 链 免 疫 反 应 ( AS- PCR) : 根据 RHD 基因和 RHD 286A 等位基因相关

4、序列设计一组特异扩增 RHD 286A 等位基因的引 物:上 游 引 物5 GGCAATCCTGCTGGACA3 (U66341, 1460-1475, 下划线碱基为突变碱基) , 下 游引物 5 TGGGCAACAAAAGTGAAA 3 (U66341, 1943-1926) 。PCR 反应总体积 10 “l, 其中含模板 DNA 0. 2 “l (约含 DNA 5 10 ng) , 特异性引物终浓 度 250 nmol/ L, MgCl2终浓度 1. 5 mmol/ L, dNTP 终 浓度 200 mmol/ L, Taq DNA 聚合酶 0. 2 U (日本 TaKaRa 公司) 。P

5、CR 扩增条件: 95 预变性 5 min, 然后 94 变性 30 s、 61 退火 30 s 和 72 延伸 50 s, 循环 30 次, 最后 72延伸 5 min。特异性扩增 产物为 484 bp, 产物通过 2% 琼脂糖电泳, 用凝胶成 像仪 (美国 SYNGENE 公司) 观察结果。DNA 标准 参照物为 DL 2000 (日本 TaKaRa 公司) 。 6. D 杂合性检测: 参照 Perco 等 9的方法, 用特 异性引物 u1-s 和 rnb31 PCR 检测 Rh 杂合盒。如果 可以扩增得到 2778 bp 的特异性片段, 表明存在 Rh 杂合盒, 有 RHD 基因的缺失,

6、 反之, 则不存在 Rh 杂 合盒, 没有 RHD 基因的缺失。 二、 结果 1. 先证者及其家系成员血清学表型: 先证者红 细胞与抗 D 试剂在盐水反应 (试管法) 中呈阴性, IAT 检测结果呈阳性, 属弱 D 表型; 先证者祖父、 祖 母、 父亲和母亲都是 Rh 阳性表型, 其中先证者祖父 和父亲的红细胞与抗 D 试剂在盐水反应中 (试管 法) 的凝集强度约 2 + , 只有正常对照 (4 + ) 的一半 左右。先证者及其家庭成员的 Rh 表型分别为先证 者 Cc 弱 Dee、祖 父 CCDee、祖 母 CCDee、父 亲 CCDee、 母亲 ccDEe (图 1) 。 2. RHD基因

7、序列分析结果: 测序结果表明, 先 图 1 RHD 286A 等位基因的家系遗传图 D (286A) / d 复合杂合子的男性携带者; D ( 286A) / D 复合杂合子的男性携带者; 携带正常 RHD 基因的女 性; 箭头所指为先证者 8361中华医学杂志 2005 年 6 月 22 日第 85 卷第 23 期 Natl Med J China,June 22, 2005, Vol 85,No. 23 证者 RHD 基因外显子 2 有 286G A 的改变 (图 2A) , 在其余 9 个外显子及侧翼序列中未发现有其 他核苷酸改变。先证者祖父和父亲则为 286 G/ A 杂合子 (图 2

8、B) 。先证者的祖母和母亲外显子 2 序 列未发现有改变 (图 2C) 。 图2 外显子2 的部分核苷酸序列分析图 箭头所指部 位是 286 位, A. RHD 286A 等位基因; B. RHD 286G 和 286A 杂合; C. 正常 RHD 基因 3. AS-PCR 结果: 在 354 名随机 Rh 阳性人群和 188 名随机 Rh 阴性人群中未发现 RHD 286A 等位 基因。先证者及其祖父、 父亲的 AS-PCR 结果阳性, 而先证者的祖母和母亲结果阴性 (图 3) 。 M. DNA 标准参照物; 1. 先证者祖父; 2. 先证者祖母; 3. 先证者父亲; 4. 先证者母亲; 5

9、. 先证者 图 3 RHD 286A 的 AS-PCR 结果 4. D 杂合性检测结果: 检测 Rh 杂合盒, 发现先 证者和母亲为阳性, 而先证者的祖父、 祖母和父亲是 阴性 (图 4) 。 三、 讨论 最近的研究表明, 单个核苷酸突变引起的氨基 M. DNA 标准参照物; 1. 先证者祖父; 2. 先证者祖母; 3. 先证者父亲; 4. 先证者母亲; 5. 先证者 图 4 D 杂合性检测 酸替换是产生弱 D 表型的主要分子机理 7。已经 发 现 43 种 弱 D 等 位 基 因 ( http: / / www. uni- ulm. de/ %7Efwagner/ RH/ RB/ ) , 但

10、是在中国人群仅 有 10 例弱 D 表型、 6 种弱 D 等位基因的报道 4, 5。 本文先证者经 IAT 试验鉴定为弱 D 表型。 RHD 基因序列分析发现有外显子 2 的 286G A 的核苷酸改变, 该突变导致 RhD 蛋白第二胞外环 96Gly Ser 氨基酸的改变。在随机选取的 354 名 Rh 阳性和 188 名 Rh 阴性人群中均未发现 RHD 286A 等位基因, 检索文献和与 Genbank 中的数据比 对, 未发现 RHD 基因有 286A 突变的报道。说明 286A 不是单核苷酸多态性 (SNP) , 而是 RHD 基因 的一个新的突变位点。在家系研究中发现先证者的 祖父

11、和父亲为该突变杂合子, 说明该突变遗传源于 先证者祖父。 D 杂合性的检测表明先证者和其母亲存在 RHD 基因的缺失。结合序列分析、 AS-PCR 的结果, 推测先证者、 先证者的祖父、 祖母、 父亲和母亲的 RHD 基因型分别为 D (286A) / d、 D (286A) / D、 D/ D、 D (286A) / D 和 D/ d。我们推测 D (286A) / d 复合 杂合子是引起先证者 D 抗原极弱表达的主要原因。 先证者祖父和父亲携带的杂合的 RHD 286A 等位基 因使得 D 抗原表达的强度减半, 因此, 我们推测除 了 RHD 基因表达的剂量效应外, RHD 286A 等位

12、基 因干扰正常 RHD 基因的表达可能也不能排除。 根据 Wagner 等 3的分析, 位于胞外和胞内的 氨基酸突变对 D 抗原量的表达影响比位于红细胞 膜上的氨基酸突变要小, 而靠近膜表面的氨基酸突 变对 D 抗原表达质的改变影响最大。286G A 突 变导致的氨基酸突变正好位于第二胞外环靠近膜的 位置。但是, 因为在极弱表达的 D 抗原中很难鉴定 D 表位的改变, 目前还不能确定 RHD 286A 等位基 因是否会产生部分 D 表型。 9361中华医学杂志 2005 年 6 月 22 日第 85 卷第 23 期 Natl Med J China,June 22, 2005, Vol 85,

13、No. 23 本文报道的 RHD 286A 是一种新的 RHD 等位 基因, 引起 D 抗原的弱表达。RHD 286A 的鉴定增 加了已知的 RHD 等位基因数目, 对 Rh 血型基因的 变异、 进化、 多态性和表达的研究、 临床输血策略的 制定和将来 RHD 基因分型准确性的提高有重要的 意义。 参考文献 1Avent ND,Ridgwell K,Tanner MJ,et al. cDNA cloning of a 30 kDa erythrocyte membrane protein associated with Rh( Rhesus) - blood-group-antigen exp

14、ression. Biochem J, 1990, 271: 821-825. 2Shao CP,Xiong W. A new PCR method for direct determination of RHD zygosity. Natl Med J China, 2004, 84: 736-739. 邵超鹏, 熊文. 一种新的 RHD 合子型直接测定方法. 中华医学杂 志, 2004, 84: 736-739. 3Wagner FF,Frohmajer A, Ladewig B, et al. Weak D alleles express distinct phenotypes. Blo

15、od, 2000, 95: 2699-2708. 4Lin LL,Shih MC,Hsieh MH,et al. Molecular basis of weak D in Taiwanese. Ann Hematol, 2003, 82: 617-620. 5Shao CP,Maas JH,Su YQ,et al. Molecular background of RHD- positive,D-negative,D (el)and weak D phenotypes in Chinese. Vox Sang, 2002, 83: 156-161. 6Zhou YY,Xiong W,Shao C

16、P. Whole exon 5 and intron 5 replaced by RHD/ CE in partial D phenotype DVa(Hus) . J Exp Hematol, 2005, 13: 140-142. 周一炎, 熊文, 邵超鹏. 部分 D 表型 DVa(Hus) 在第 5 外显子和第 5 内含子发生 RHD/ CE 基因交换. 中国实验血液学杂志, 2005, 13: 140-142. 7Wagner FF,Gassner C,Muller TH,et al. Molecular basis of weak D phenotypes. Blood, 1999,

17、93: 385-393. 8Legler TJ,Maas JH,Kohler M,et al. RHD sequencing:a new tool for decision making on transfusion therapy and provision of Rh prophylaxis. Transfusion Medicine, 2001, 11: 383-388. 9Perco P,Shao CP,Mayr WR,et al. Testing for the D zygosity with three different methods revealed altered Rhes

18、us boxes and a new weak D type. Transfusion, 2003, 43: 335-339. (收稿日期: 2005-03-17) (本文编辑: 李伟) 作者单位: 200025 上海第二医科大学附属瑞金医院 上海血液学 研究所 通讯作者: 王鸿利, Email: wanghongli602163. com 抗凝血酶基因 C2757T 杂合突变致型遗传性 抗凝血酶缺陷症 周荣富 戴菁 傅启华 王文斌 谢爽 丁秋兰 胡翊群 王学锋 王鸿利 遗传性抗凝血酶 (antithrombin,AT) 缺陷症是 由 AT 基因突变引起, 可分2 型: 型主要表现为 AT 抗

19、原 (AT: Ag) 和活性 (AT: A) 水平的同步减低, 型由 AT 结构异常所致 1。国外已报道 300 余例, 基因突变种类超过 130 种; 但国内仅我们报道过 1 例 2。本文对另一个 AT 缺陷症家系进行研究, 发 现此家系为 I 型遗传性 AT 缺陷症, 由 AT 基因 C2757T 杂合突变引起。 一、 对象与方法 1. 家系资料: 先证者, 男,21 岁。2003 年 7 月 因头痛、 抽搐、 左侧肢体瘫痪入院, 经头颅 CT 诊断 为脑静脉血栓形成, 予以治疗后恢复; 1 个月后, 又 因左下肢肿胀、 疼痛就诊, 经彩色多普勒超声检查, 诊断为左下肢深静脉血栓形成。3

20、个月后, 患者再 次因腹痛、 便血就诊, 肝、 肾功能均正常, 剖腹探查发 现肠系膜血管血栓形成, 手术切除坏死肠管。现服 用 “华法令” 治疗。家系 3 代 8 人中, 除先证者外均 无类似病史。 2. AT 抗原、 活性及凝血像检测: 先证者和所有 家系成员分别静脉采血 1. 8 ml,加入含 0. 2 ml 129 mmol/ L 枸橼酸钠抗凝, 立即 4、 900 g 离心 15 min, 吸取上层血浆。AT 抗原 (AT: Ag) 检测采用免 疫比浊法 (美国 Beckman Coulter 公司, 美国 Array 360 仪器) , AT 活性 (AT: A) 、 蛋白 C 活性

21、 (PC: A) 及 蛋白 S 活性 (PS: A) 检测采用发色底物法 (美国 Dade Behring 公司、 日本 Sysmex 1500 全自动血凝 仪) 。同时检测部分凝血活酶时间 (APTT) 、 凝血酶 原时间 (PT) 。 3. 基因组 DNA 抽提: 使用美国 Biosynthesis 公 司 DNA 抽提试剂盒, 按试剂说明书操作。 4. PCR 检测: 按文献 2 报道的序列合成 PCR 引物 (其中扩增 exon2 区域的引物序列: 上游 5 AATCCTCTGCTTTACTGGTG 3,下 游 5 TGCTCC- TAACAAGGTGGC 3) 。先扩增先证者 AT 基因各个 外显子及侧翼序列, 发现突变区域后, 再扩增家系其 他成员的相应片段。PCR 反应条件如文献 2 报道 (扩增 exon2 区域时, 退火温度为 52) 。PCR 仪为 美国 PE 公司 GeneAmp PCR System 9600。 0461中华医学杂志 2005 年 6 月 22 日第 85 卷第 23 期 Natl Med J China,June 22, 2005, Vol 85,No. 23

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