小白鼠染色体标本的制作、染色与观察.doc

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1、小白鼠染色体标本的制作、染色与观察姓名: 学号:实验时间:1. 实验目的(1) 初步掌握小鼠睾丸细胞染色体标本的基本制作过程和Giemsa染色法,了解各操作步骤的原理。(2)了解常用实验动物染色体的数目及特点。(3)认识不同生物染色体的特征。2. 实验原理凡处于活跃增殖状态或者经过各种处理,任何动物组织的细胞都可进入分裂时期,均可用于染 色体分析。在正常动物体内,精巢和骨髓均为是活跃分裂的组织。给动物注射一定剂量的秋水仙素, 即可使许多处于分裂的细胞停滞于中期, 然后采用常规空气干燥法制备染色体, 即可得到大量可分 析的染色体标本。本方法简便、可靠,不需要经体外培养和无菌操作,易于推广。骨髓细

2、胞是用于 动物细胞遗传学研究很好的材料。 但在取材方面,精巢又比骨髓要简易一些,故本实验选用小鼠的 精巢为实验材料。对于小鼠精巢染色体标本的制作,一般包括以下几个要点:用一定剂量的秋水仙素破坏纺锤 丝的形成,使细胞分裂停滞在中期,使中期染色体停留在赤道面处;用低渗法使细胞膨胀,以至 于在滴片时细胞胀破,使细胞的染色体铺展到载玻片上;空气干燥法可使细胞的染色体在载片上 展平,经Giemsa染色后便可观察到染色体的显微图象。Giemsa染色是最常用的染色方法之一,适用于多种细胞和染色体染色。主要用Giemsa染液可以将细胞核染成紫红色或蓝紫色,胞浆染成粉红色,在光镜下呈现出清晰的细胞及染色体图像。

3、3. 实验材料和用品(1)材料:小白鼠(2)试剂:秋水仙素、生理盐水(0.9%的NaCI溶液)、0.3%KCI低渗溶液、固定液(甲醇:冰醋 酸=3: 1)、Giemsa染液(3)器材:解剖盘、解剖镊、解剖剪、小烧杯(X 2)、吸管、玻璃刻度离心管、恒温水浴锅、离 心机、铜网、预冷载玻片、记号笔、普通光学显微镜、玻璃等4. 实验步骤(1)小白鼠染色体标本制作 取雄性小鼠以每克体重4卩g注射秋水仙素,经1416小时后,断头法杀死小鼠,取出睾 丸用生理盐水(0.9%的NaCI)洗去血污。 放入装有1ml 0.3%KCI液的小烧杯中剪碎至呈乳白色。 用铜网过滤到刻度离心管中,再加 0.3%KCI液至4

4、ml。 37 C静置30分钟,进行低渗处理。 以8001000转/分离心8分钟。 弃上清液,加入2ml甲醇冰醋酸固定液(3: 1),并用吸管至管底吹气,轻轻打散细胞, 固定8分钟。 再以8001000转/分离心8分钟。 弃上清液,加1ml固定液,再制成细胞悬液,固定 5分钟。 取洁净的低温预冷载片,距载片1015cm高度滴下23滴细胞悬液,从载片一边向另一边 轻轻吹气,并同时轻轻敲打载片,以使细胞均匀分布和促使染色体展开。 用滤纸擦去载片上多余液体,空气干燥或成文火干燥。(2) 小白鼠染色体标本染色与观察 倒置染色法在玻璃板上用废旧载玻片作支架, 使标本载玻片的标本面向下放置到支架上, 在玻璃

5、板和标本载玻片之间滴加 Giemsa染液。目的一可以节省染料,二可以避免染液快速挥发, 三可以防止染色颗粒沉淀,影响观察。 在操作时应注意,多个样品同时染色应摆放紧密,不要有间 隙;滴染液时应尽量慢,不要有气泡,以免部分染色体不被着色。 用Giemsa染色2030分钟,细水冲洗玻片背面,去多余染液,气干。 镜检:低倍镜下寻找分散良好、染色适中的分裂相,高倍镜或油镜下观察染色体形态并计数。5. 实验结果此图是经秋水仙素处理的小鼠精细胞染色体标本照片 ,数数发现有 36条染色体而非 40条,可 能是应为染色体重叠程度太高而造成计量误差。视野中可见大量的精子, 它们有一个比较圆的头部和鞭毛, 还有一

6、些细胞有一个尖, 那是未变 形的精子。部分细胞处于减数第一次分裂中期,这样的细胞是二倍体,应有 40条染色体;有些处 于减数第二次分裂中期,这样的细胞是单倍体,应有 20条染色体。还有一些细胞处于分裂期,但 不是中期, 这类细胞染色体的凝集程度不是很高, 呈丝状。 处于减数分裂中期的染色体染色质凝缩 程度达到最大。小鼠的染色体多为端着丝粒染色体,呈“ V'字形或“ U'字形,染色体呈短棒状。6. 讨论与结论(1) 向小鼠腹腔注射秋水仙素时,用左手抓住小鼠背部的皮,右手持注射器,进针时倾斜45°, 在开始注射前, 将针头略向上挑, 以免将秋水仙素注入小鼠的肠道内。 注射

7、过程中注意观察小鼠的 反应。如果秋水仙素被正确注入腹腔内,小鼠应该是很安静的。(2) 断头法处死小鼠后,血液要冲洗干净,以免影响实验观察。(3) 从开始加入0.3%KCI低渗溶液第一次离心前,时间最好控制在 50-60min。过滤出来的如果不 是乳白色悬浊液就再过滤一次。(4) 两次离心的转速控制在 8001000转/分,不要太高,以免破碎细胞。第一次离心去上清液加 固定液时时不要过分吹打,第二次离心后要充分将细胞吹开。( 5 )滴片时,使滴管与载玻片间的距离尽量远,这样细胞才能被“摔碎',这一点十分重要,从实验结果看来,低渗使细胞破碎效果并不佳,通过摔碎细胞,让染色体更容易辨认,否则

8、,细胞整个 将成蓝色圆状,而膜内物质看不清。(6) 滴完片之后,将载玻片的一端轻轻在试验台边缘敲打,使未破碎的细胞破碎。(7) 边敲打载玻片边从载玻片一边向另一边轻轻吹气,以使细胞均匀分布和促使染色体展开。(8) 多个样品同时进行染色时,载玻片应摆放紧密,不要有间隙;滴染液时应尽量慢,不要有气 泡,以免部分染色体不被着色。染色时间 30分钟左右。( 9)冲洗载玻片时从背面冲洗。(10) 已知小鼠染色体的数目为 40条,如果实验所得结果远小于这个数值,分析原因可能有二: 在滴片、染色、冲洗等步骤中操作不当,造成染色体丢失;该细胞处于第二次减数分裂中期, 染色体总数为20。染色体重叠程度太高而造成计量误差。(11) 不同动物的染色体条数:猫 38,小鼠 40,大鼠 42,兔44,人 46,马64,鸡 78,狗78。(12) 染色体有三个重要特征:数目;形态(主要是着丝点位置,有中部、亚中部、端部、亚 端部);大小(相对长度)。生物分类时,先观察染色体条数,再观察染色体形状,从而判断生 物种类。(13) 凝集素(PHA有促凝集和促分裂两个作用。(14) 在20对小鼠染色体中,有18对染色体的着丝点是端着丝点,染色体呈“ U'或“V'型,第 17、 18 对染色体有一点小短臂。(15) 冷的载玻片可以起到减小表面张力的作用,铺散细胞。

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