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1、RNA浓度的OD比值说明OD260/OD280=1.92.0 说明RNA居多，纯度已经很高了。纯DNA：OD260/OD2801.8(1.9，表明有RNA污染；1.6，表明有蛋白质、酚等污染）纯RNA：1.7 OD260/OD2802.0（1.7时表明有蛋白质或酚污染；2.0时表明可能有异硫氰酸残存一般来说OD260代表核酸的吸光度，OD280代表蛋白质的吸光度，OD230代表其他杂质（多糖等）的吸光度。A代表吸光值，而OD是光密度值，一个意思。当A260读数处在0.1-0.5 之间，A200 到A320之间的数值构成一条光滑的曲线时， 少量苯酚（30 ul/ml）残留会使A230，A260，
2、A280均变大（差不多增加一倍），但A260/A280和A260/A230均在2左右。少量异硫氰酸胍（132 uM）残留使A230变大，但A260，A280几乎不变，所以A260/A280仍在2左右，而A260/A230大大低于2。大量异硫氰酸胍（2.4 M）残留使A230，A260，A280均变大，根本就没有办法测定了。PEG（6.25%）残留使A230，A260，A280均变大，但对A230，A260影响更大，所以A260/A280比2大不少，而A260/A230仍在2左右。 核酸抽提中常用的试剂，如Phenol，GuanidineIsothiocyanate，PEG都能使A260和A28
3、0的值变大，但是却可能使二者的比值与高纯度核酸的比值一致。因为A260值几乎是峰值，所以有必要在其两边各取一个：A280和A230。干净的核酸A260/A230应该在2左右。如果有在230 nm 处的强吸收提示污染有酚盐离子等有机化合物解决办法：1. 蛋白质污染：确保不要吸入中间层及有机相。减少起始样品量，确保裂解完全、彻底。加入氯仿后首先要充分混匀，并且离心分层的离心力和时间要足够。如果所得RNA的OD260/OD280比值偏低，则用氯仿重新抽提一次，再沉淀，溶解。2. 苯酚残留：确保不要吸入中间层及有机相。加入氯仿后首先要充分混匀，并且离心分层的离心力和时间要足够。3. 多糖或多酚的残留：
4、一些特殊的组织和植物中，多糖、多酚含量较多，这些残留也会导致OD260/OD280比值偏低。因此，从这类材料中提取RNA时，需要注意多糖、多酚杂质的去除。4. 设备限制：测定OD260及OD280数值时，要使OD260读数在0.10.5之间。此范围线性最好。用水稀释样品：测OD值时，对照及样品稀释液请使用10 mM Tris，pH7.5。用水作为稀释液将导致比值偏低。比值低可能有蛋白污染，高了可能有DNA污染，建议你抽提的RNA分三管，两管保存，另一管用来跑胶和测定OD，跑胶是最直观的，1%的胶就可以，抽提后马上跑，一般不会降解很多，所以设备材料不需要去酶处理不会有影响的。你的OD比值低可能是溶解时用的水的PH值偏酸。可以试着调到8.0左右再测，这样就会上来了。